9. Wodurch Dopamin reguliert wird
Dopamin wird durch eine Vielzahl von Regelmechanismen moderiert. Die folgende Darstellung ist der Beginn einer Sammlung dieser Faktoren und bei Weitem unvollständig.
Für ADHS dürften die wichtigsten Mechanismen die Dopamin-(Wieder)Aufnahme durch den DAT, der Dopamin -Efflux in den extrazellulären Raum und die Regulation der Dopaminsynthese- und Ausschüttung durch den D2-Autorezeptor sein. Die weiteren Einflüsse sind jedoch ebenfalls relevant.
-
9.1. Beeinflussung der Wiederaufnahme (DAT)
- 9.1.1. Veränderungen der Anzahl / Aktivität der DAT
- 9.1.2. D2-Autorezeptoren regulieren DAT
- 9.1.3. Beta-Phenylethylamin (PEA) beeinflusst DAT via TAAR1 (?) und D2-Autorezeptoren
- 9.1.4. Natrium beeinflusst DAT-Wiederaufnahme
- 9.1.5. Phosphorylierung beeinflusst DAT
- 9.1.6. Ubiquitinierung beeinflusst DAT
- 9.1.7. Syntaxin 1A (Syn1A) erhöht DA-Aufnahme und verringert Efflux
- 9.1.8. S-Palmitoylierung erhöht DAT-Aktivität
- 9.1.9. Calcium-Calmodulin-abhängige Proteinkinase (CaMK) reguliert DAT
- 9.1.10. α-Synuclein (α-Syn) erhöht DAT-Aktivität
- 9.1.11. Flotillin 1 (Flot1) erhöht DAT-DA-Efflux
- 9.1.12. Protein-Protein-Wechselwirkungen regulieren DAT
- 9.1.13. βγ-Untereinheiten des G-Proteins hemmen DAT-Aktivität
- 9.1.14. Synaptogyrin-3 erhöht DAT-Aktivität
- 9.1.15. Membran-Rafts beeinflussen DAT-Aktivität
- 9.1.16. Cholesterin erhöht DAT-Aktivität
- 9.1.17. Cannabinoide hemmen Dopaminwiederaufnahme
- 9.1.18. N-Glykane erhöhen DAT-Aktivität
- 9.1.19. DHEA blockiert die Dopamin-Aufnahme in striatalen Synaptosomen
- 9.1.20. DAT-Genvarianten
- 9.1.21. Frühkindliches enriched environment verringert DAT im mPFC
- 9.1.22. DAT-Regulation durch Autophagie
- 9.1.23. Nurr1 und Pitx3 aktivieren DAT-Promotor-Transkription
- 9.1.24. DAT-Regulation durch Epigenetik
- 9.2. Dopamin-Autoregulation
- 9.3. Externe Dopamin-Regulation
-
9.4. Regelmechanismen nach Neurotransmittern / Hormonen etc.
- 9.4.1. Dopamin - Dopamin Autoregulation
- 9.4.2. Noradrenalin
- 9.4.3. Glutamat
-
9.4.4. Acetylcholin
- 9.4.4.1. β2-Nikotinrezeptor-Agonisten verringern tonisches und erhöhen phasisches Dopamin im Striatum
- 9.4.4.2. β2-Nikotinrezeptor-Antagonisten verringern phasisches Dopamin im Striatum
- 9.4.4.3. Acetylcholin bewirkt phasische Dopaminausschüttung im Striatum
- 9.4.4.4. Acetylcholin aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
- 9.4.5. TAAR1 hemmt Dopamin
- 9.4.6. Adenosin hemmt Dopamin
- 9.4.8. Casein Kinase 2 (CK2) reguliert Dopamin
- 9.4.9. Zelluläres Prionprotein (PrP(C)) reguliert Dopamin
- 9.4.10. Östrogen und Östradiol fördern Dopamin im Striatum und PFC
- 9.4.11. Melanin-konzentrierendes Hormon (MCH) hemmt Dopamin
- 9.4.12. Serotonin hemmt Dopamin
- 9.4.13. CHR aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
- 9.4.14. Substanz P
- 9.4.15. Neuropeptid Y aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
- 9.4.16. Orexin (Hypocretin) aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
- 9.4.17. Neuropeptide ohne Aktivierung dopaminerger Nervenzellen in VTA
- 9.4.18. Cortisol hemmt Dopaminsynthese
- 9.4.19. β-Arrestin hemmt Dopaminwirkung
- 9.4.20. VMAT2-Blockade unterbindet Dopaminübertragung
- 9.4.21. Botulinum A und B beeinträchtigen Dopaminübertragung
- 9.4.25. GABA hemmt Dopamin
- 9.4.26. FOXP2HUM beeinflusst Dopaminspiegel im Gehirn
- 9.4.27. REV-ERB-Alpha
- 9.4.28. Oxytocin
- 9.4.29. RACK1
- 9.4.30. Nf-kB
- 9.4.31. Steroidhormone beinflussen Dopamin
- 9.4.32. Extrazelluläres Kalzium beeinflusst Dopaminfreisetzung in Striatum und Mittelhirn
- 9.4.33. Tyrosingabe / Tyrosindepletion beeinflusst DA-Synthese
- 9.4.34. KCNH3-Inhibitor erhöht Dopamin-Efflux
- 9.4.35. BDNF reguliert Dopamin im Striatum
- 9.4.36. GDNF reguliert Dopamin-Freisetzung und Dopamin-Aufnahme im Striatum
- 9.4.37. Insulin reguliert Dopamin in Striatum, VTA, Substantia nigra
- 9.5. Nahrung, Medikamente, Gifte
9.1. Beeinflussung der Wiederaufnahme (DAT)
Die Dopamin-(Wieder)Aufnahme durch den DAT ist der wichtigste Mechanismus zur Regulation und Beendigung der Dopamin-Signalübertragung im Gehirn. Eine fehlregulierte DAT-Funktion steht mit verschiedenen neurologischen und psychiatrischen Störungen in Verbindung, darunter ADHS, Schizophrenie, Parkinson-Krankheit und Drogenabhängigkeit. Eine Fülle von Mechanismen beeinflussen die Aktivität und die zelluläre Verteilung von DAT, sodass die Feinabstimmung der Dopamin-Homöostase über ein komplexes Zusammenspiel mehrerer Signalpfade erfolgt.1234
DAT-Expression wird reguliert durch:5
- Transkriptionsfaktoren
- Proteinkinasen
- Protein Kinase A (PKA)
- heterotrimere G-Proteine
- Bindungspartner-Interaktionen
- PKC oder ERK
- dies wird durch etliche Neurotransmitter-Rezeptorsysteme mit beeinflusst, z.B.:3
- Dopamin
- Opioide
-
Glutamat
Es bestehen funktionelle Wechselwirkungen zwischen DAT, D2-DA-Rezeptoren und βγ-Untereinheiten des G-Proteins.
- dies wird durch etliche Neurotransmitter-Rezeptorsysteme mit beeinflusst, z.B.:3
Aufbau des DAT; C-Terminus und N-Terminus
Der DAT besteht aus 12 Transmembran (TM) überspannenden Helices. Die TMs 1, 3, 6 und 8 bilden den Signalpfad für die Substratpermeation.
Ungewickelte Abschnitte von TM1 und TM6 bilden den Kern der aktiven Seite und trennen die Helices in funktionelle Segmente. Extrazelluläre und intrazelluläre Tore oberhalb und unterhalb des aktiven Zentrums bestimmen nach innen und nach außen gerichtete Konformationen und kontrollieren die Richtung der Dopamin-Bewegung. Der DAT besitzt große N- und C-terminale Ausläufer (N-Terminus und C-Terminus), die in das Zytoplasma hineinragen. C- und N-Terminus besitzen Andockstellen für posttranslationale Modifikationen, Interaktionen mit Bindungspartnern und regulatorische Motive.3 Auch über diese kann die Aktivität des DAT gesteuert werden.
Der C-Terminus (C-terminale Region, Carboxy-Terminus) ist das Molekülende eines Proteins / Peptids, der die freie, nicht an einer Peptidbindung beteiligte Carboxygruppe (früher: Carboxylgruppe; -COOH) enthält. Der N-Terminus (N-terminale Region, Amino-Terminus) am entgegengesetzten Molekülende enthält die freie, nicht an einer Peptidbindung beteiligte Aminogruppe (-NH2). Proteine werden vom N-terminalen Ende aus synthetisiert. Am C-Terminus endet die Proteinbiosynthese am Ribosom. Die letzte Aminosäure wird durch das letzte codierende mRNA-Triplett vor dem Stopp-Codon bestimmt. So sind Protein-Anfang und Protein-Ende unterscheidbar. Da in einem Polypeptid immer eine Carboxygruppe mit einer α-ständigen Aminogruppe der folgenden Aminosäure verbunden wird, bleibt am Anfang eines Polypeptids bzw. Proteins eine Aminogruppe und am Ende eine Carboxygruppe frei.67
9.1.1. Veränderungen der Anzahl / Aktivität der DAT
9.1.1.1. Veränderungen der DAT über das Lebensalter
Ratten haben bei der Geburt 20-30 % der DAT, die sie im Alter von 14 bis 60 Tagen haben. Bis zum Alter von 104 Wochen steigt die DAT-Molekularmasse weiter leicht an. Ebenso ist die N-gebundene Glykosylierung, die die DAT-Verarbeitung und -Zielbestimmung reguliert, bei der Geburt vernachlässigbar.8
Bei Menschen haben Erwachsene eine wesentlich geringere Anzahl von Dopamintransportern im Striatum als Kinder. Je 10 Jahre Lebensalter ergebe sich ein Rückgang um 7 %, wobei die Abnahme im Alter bis etwa 40 Jahre deutlich höher sei als danach. Bei 50-Jährigen sei die Anzahl der DAT nur noch etwa halb so hoch wie bei 10-Jährigen.910 (6 % Abnahme ab dem Alter von 40)11
Gleichzeitig verringert sich im Alter die Anzahl der dopaminergen Neuronen. Die Menge des phasisch ausgeschüttete und des basalen extrazellulären Dopamins im Striatum bleibt gleich.12
9.1.1.2. Up- und Downregulation des DAT
DAT werden auch durch extrazelluläre Dopaminspiegel reguliert. Eine Verringerung der Dopaminsynthese verringerte die Dichte der DAT und ihre Funktion im Striatum, eine Erhöhung des Dopaminspiegels bewirkte eine Upregulation der DAT-Bindung.13 Eine Stimulation von D2-Auto-Rezeptoren führt ebenfalls zu einer Downregulation von DAT im Striatum.14 Dies deutet auf eine kompensatorische Down- oder Upregulation der DAT hin, als Anpassung an reduzierte bzw. erhöhte Dopaminspiegel. Eine Downregulation der DAT wurde auch in dopaminergen Zellen im Mittelhirn nach dem Verlust von Dopaminsynapsen im Striatum beobachtet.15
Wichtige Erkenntnisse zur Funktion der DAT ergeben sich aus der Beobachtung von Nagetieren ohne Dopamintransporter. Siehe hierzu unter ⇒ DAT-KO-Maus im Beitrag ⇒ ADHS im Tiermodell im Kapitel ⇒ Neurologische Aspekte.
Alpha-methyl-p-tyrosin bewirkt gleichfalls eine Downregulation von DAT im Striatum.16
9.1.1.3. Dopamintransporter bei ADHS erhöht oder verringert?
Während die Frage, welche DAT-Gen-Variante bei ADHS häufiger ist, regelmäßig mit “DAT 10R” beantwortet wird, sind die Aussagen darüber, ob die DAT-Anzahl bei ADHS eher erhöht oder verringert ist, widersprüchlich.
Die Folgen scheinen jedoch teilweise identisch.
Eine verringerte DAT-Anzahl/DAT-Aktivität führt zu einem erhöhten extrazellulären Dopaminspiegel (tonisch hyperdopaminerg) und einer verringerten phasischen Ausschüttung aufgrund mangelhaft wiederbefüllter Vesikel, während eine erhöhte DAT-Anzahl/DAT-Aktivität zu einem verringerten extrazellulären Dopaminspiegel führt (tonisch hyperdopaminerg), bei gleichzeitig zu hoher Wiederaufnahme des phasisch ausgestoßenen Dopamins, was dessen Wirkung an den Rezeptoren verhindert (phasisch hypodopaminerg). Beide Hypothesen erklären schlüssig einen verringertes phasisches Dopaminwirkniveau (phasisch hypodopaminerg).
9.1.1.3.1. Hypothese 1: verringerte DAT bei ADHS (Folge: extrazellulär hyperdopaminerg, phasisch hypodopaminerg)
Eine Metaanalyse von 9 Studien kam zu dem Ergebnis, dass medikamentennaive ADHS-Betroffene eine um 14 % verringerte DAT-Anzahl im Striatum hatten, während zuvor medikamentierte ADHS-Betroffene eine erhöhte DAT-Anzahl im Vergleich zu Nichtbetroffenen aufwiesen.17 Die Studie scheint indes Einschränkungen hinsichtlich der Frage der Definition von Medikamentennaivität zu unterliegen.18
Eine neuere Studie fand ebenfalls eine Korrelation zwischen inaktiveren DAT und ADHS, während ein überaktiver DAT mit Alkoholsucht korrelierten.19
9.1.1.3.2. Hypothese 2: erhöhte DAT bei ADHS (Folge: extrazellulär und phasisch hypodopaminerg)
Andere Quellen berichten, dass bei Erwachsenen mit ADHS die Anzahl der Dopamintransporter im Striatum gegenüber Nichtbetroffenen um 70 % erhöht sei.20
Eine mögliche Schlussfolgerung könnte sein, dass erhöhte DAT-Spiegel bei ADHS zu einer Verringerung des synaptischen und extra-synaptischen = extrazellulären Dopamins führt. Denkbar wäre ebenso, dass ein Anstieg der DAT eine adaptive Upregulations-Reaktion darstellt, um ein erhöhtes Dopaminfreisetzungsniveau zu kompensieren.
In beiden Fällen kann Methylphenidat diese Werte normalisieren.21
9.1.1.3.3. Studienlage: eher erhöhte DAT (Anzahl/Aktivität) bei ADHS
Bislang deutet die Studienlage darauf hin, dass bei ADHS-HI (und ggf. ADHS-C) die DAT erhöht oder aktiver sind als bei ADHS-I. Von einer (im Vergleich zu Nichtbetroffenen) verringerten DAT-Anzahl bzw. -Aktivität bei ADHS wird dagegen nicht berichtet. Mehr hierzu unter DAT-Unterschiede bei den Subtypen im Beitrag Die Subtypen von ADHS: ADHS-HI, ADHS-C (Mischtyp), ADHS-I (ADS), ADHS-RI (restricted inattentive) und andere
9.1.2. D2-Autorezeptoren regulieren DAT
D2-Autorezeptoren beeinflussen
- die Expression des DAT auf der Plasmamembran
- die Aktivität des DAT
D2-Rezeptor-Agonisten können die DAT-Expression verringern (im Putamen caudatus) oder erhöhen (im Nucleus accumbens).22
Umgekehrt kann die DAT-Expression die Funktion des D2-Autorezeptors beeinträchtigen. In DAT-KO-Mäusen findet sich nahezu keine D2-Autorezeptor-Aktivität. Weiter ist bei diesen der Gewebe-Dopamin-Gehalt stark verringert, während der Dopamin-Stoffwechsel erhöht ist. D2/- Mäusen zeigten dagegen einen unveränderten Gewebe-Dopamin-Gehalt und nur leicht erhöhten Dopaminstoffwechsel. Das Fehlen von D2-Autorezeptoren scheint die Dopamin-Synthese und den Dopamin-Stoffwechsel kaum zu beeinflussen, während die Selbsthemmung der Dopamin-Freisetzung und -Wiederaufnahme stark beeinträchtigt ist.23
Mehr zu den D2-Autorezeptoren siehe unten in diesem Beitrag.
9.1.3. Beta-Phenylethylamin (PEA) beeinflusst DAT via TAAR1 (?) und D2-Autorezeptoren
Beta-Phenylethylamin (PEA)24 und Dopamin25 beeinflussten die Funktion von DAT (Slc6A3) sowohl über TAAR1- als auch D2-Autorezeptoren. Eine andere Studie fand keine Beeinflussung des DAT bei TAAR1-KO-Mäusen oder durch TAAR1-Agonisten oder TAAR1-Antagonisten bei Wildtyp-Mäusen.26
9.1.4. Natrium beeinflusst DAT-Wiederaufnahme
Die Dopaminwiederaufnahme ist von Natrium abhängig.27 Wird Natrium aus dem extrazellulären Raum entfernt, können DAT kein Dopamin wiederaufnehmen. Der Natriumgradient ist die treibende Kraft des Dopamintransports im Nucleus accumbens.28
Eine Substitution von Natrium bewirkt eine rasche Hyperpolarisierung der Membran, was den Dopamin-Efflux verringert.29 Eine verringerte DAT-Aktivität könnte eine Rolle bei der Erzeugung einer erhöhten NAc-DA-Übertragung während des Appetits auf Na (Salz: NaCl) spielen, was den motivierenden Eigenschaften von Natrium bei der Natrium-depletierten Ratte zugrunde liegen könnte.
9.1.5. Phosphorylierung beeinflusst DAT
Phosphorylierung wird von verschiedenen Kinasen an zwei verschiedenen Regionen der Domäne katalysiert.3
Die Phosphorylierung wird verstärkt durch
- Aktivierung der Proteinkinase C (PKC)
-
AMP30
- von PKC abhängig
- Kinase-Aktivierung ggf. durch medikamenteninduzierten Anstieg des zytosolischen Ca2+ oder reaktiver Sauerstoffspezies
- METH
- von PKC abhängig
- Kinase-Aktivierung ggf. durch medikamenteninduzierten Anstieg des zytosolischen Ca2+ oder reaktiver Sauerstoffspezies
Phosphorylierung wirkt am DAT-N-Terminus.
9.1.5.1. Proteinkinase C (PKC) verringert DAT-Aktivität
Die durch PKC vermittelte Phosphorylierung reguliert die DAT-Kapazität auf verschiedene Weisen schnell herunter. PKC bewirkt:
- erhöhte DAT-Endozytose31
- verringerte Transportkapazität (Vmax)315
- verringerte Rate des DAT-Plasmamembran-Recyclings34
- erhöht den Grad der DAT-Internalisierung zusätzlich
- erhöhter Efflux35 via G(q)-gekoppelte Rezeptoren36
Alle diese Prozesse bewirken eine Erhöhung extrazellulären Dopamins.3
DAT-Endozytose (Internalisierung, Downregulation)
Endozytose ist eigentlich die Aufnahme von zellfremdem Material in die Zelle (Internalisierung), indem Teile der Zellmembran unter Entstehung von Vesikeln oder Vakuolen eingestülpt oder abgeschnürt werden. Endozytose reguliert jedoch auch die Anzahl von Transportern und Rezeptoren auf der Zellmembran. Eine ausgedehnte Aktivierung von PKC löst den lysosomalen Abbau von DAT aus.31
Die DAT-Endozytose wird durch Clathrin5 vermittelt und benötigt Dynamin5, Flot137 und möglicherweise Nedd4-2 (dafür38, dagegen39 .)
Die internalisierten DAT kolokalisieren mit Transferrin und werden im endosomalen/lysosomalen Signalpfad innerhalb von 2 Stunden nach Aktivierung der Proteinkinase C vollständig abgebaut.4041
9.1.5.2. Extrazelluläre signalregulierte Kinasen (ERK1 bis ERK8) erhöhen DAT-Aktivität
ERK (extrazelluläre signalregulierte MAP-Kinase, ERK MAP-Kinase, Extracellular-signal Regulated Kinases) gehören zu den Mitogen-aktivierten Kinasen (MAP-Kinasen) und den Serin/Threonin-Kinasen. ERK regulieren Zell-Prozessen wie Mitose, Meiose, Proliferation und Zelldifferenzierung. Die ERKs werden durch Zelloberflächen-Rezeptoren reguliert.
ERK erhöhen die DAT-Transportkapazität.
ERK-Inhibitoren verringern die DAT-Expression und die DAT-Dopamin-Aufnahme.3
ERK regulieren DAT via Dopamin- und Kappa-Opioid-Rezeptoren, die die DAT-Dopamin-Aufnahme und die DAT-Oberflächenwerte durch ERK-abhängige Prozesse hochregulieren
Die ERK I/II-Aktivität wurde durch Taurin in Gegenwart von AMPA oder H2O2 erhöht.42
Taurin zeigte am Modell von SHR-Ratten (einem ADHS-Tiermodell) eine Verringerung der DAT-Dopaminaufnahme, während niedrigdosiertes Taurin diese erhöhte43
9.1.5.3. Kappa-Opiod-Rezeptoren regulieren DAT-Phosphorylierung
KOR-Antagonisten verringerten in vivo den bei der humanen DAT-Genvariante VAL559 erhöhten Dopamin-Efflux und normalisierten die Dopaminfreisetzung. Ebenso wurde die bei hDAT VAL559 verstärkte DAT-Thr53-Phosphorylierung und das erhöhte DAT-Trafficking normalisiert. Umgekehrt erhöhten KOR-Agonisten im Wildtyp die DAT-Thr53-Phosphorylierung und das DAT-Trafficking. hDAT VAL559 wird mit ADHS, ASS und BPD assoziiert.44
9.1.6. Ubiquitinierung beeinflusst DAT
Ubiquitinierung (auch: Ubiquitylierung) erfolgt durch:3
- Nedd4-2
- Parkin
Ubiquitinierung wirkt am DAT-N-Terminus.
9.1.6.1. Ubiquitinierung via Nedd4-2 beeinflusst DAT
Nedd4-2 bewirkt eine Monubiquitylierung, die durch PKC-Aktivierung (als Mechanismus für eine stimulierte Endozytose) verstärkt wird.3
Nedd4-2- ist für die durch PKC ausgelöste DAT-Endozytose erforderlich.38
9.1.6.2. Ubiquitinierung via Parkin beeinflusst DAT
Parkin bindet an den C-Terminus.45
Parkin ist eine E2-abhängige E3-Protein-Ubiquitin-Ligase und bewirkt:45
- Schutz vor Dopamin-induzierter alpha-Synuclein-abhängiger Zelltoxizität in dopaminergen SK-N-SH-Zellen
- Beeinträchtigung der alpha-Synuclein/DAT-Kopplung durch Interaktion mit dem DAT-C-Terminus
- Blockade der alpha-Synuclein-induzierten Steigerung der DAT-Zelloberflächenexpression und DAT-Dopamin-Aufnahme
9.1.7. Syntaxin 1A (Syn1A) erhöht DA-Aufnahme und verringert Efflux
Das Plasmamembranprotein Syntaxin 1A reguliert andere Proteine einschließlich Neurotransmitter-Transportern. Syn1A bindet die N-Terminus-Aminosäurenreste 1-33.3
Syn1A erhöht die DAT-Dopamin-Aufnahme und verringert den DAT-DA-Efflux.
Verringertes Syn1A oder verringerte Syn1A-DAT-Bindung bewirkt
- erhöhte Aufnahme
- erhöhte Kanalaktivität
- verringerten Efflux
- verringerte Transporterphosphorylierung
Daneben induziert Syn1A die Neurotransmitterfreisetzung aus den Vesikeln.
Die Kombination dieser Fähigkeiten von Syn1A könnte der räumlichen oder zeitlichen Koordination der Neurotransmitterwirkung dienen.
9.1.8. S-Palmitoylierung erhöht DAT-Aktivität
Palmitoylierung und Phosphorylierung regulieren DAT wechselseitig.
S-Palmitoylierung ist die Anlagerung einer gesättigten Fettacylgruppe über eine Thioesterbindung.3
S-Palmitoylierung wirkt am DAT-C-Terminus. Dabei modifiziert eine 16-Kohlenstoff-Palmitatgruppe den DAT reversibel mittels einer Thioester-Bindung.46
Native und exprimierte Dopamin-Transporter (DATs) sind palmitoyliert, was mehrere Funktionen hat:47
Verstärkte DAT-Palmitoylierung
- erhöht kinetisch und akut die DAT-Transport-Vmax
Eine Hemmung der DAT-Palmitoylierung - verringerte das Transportvolumen
- ohne Verluste von DAT-Protein
- ohne Veränderungen der DAT-Oberflächenwerte
anhaltende Unterdrückung der Palmitoylierung von Synaptosomen oder Zellen bewirkte
- DAT-Proteinverlusten
- Produktion von DAT-Fragmenten
was auf Regulierung des DAT-Abbaus durch Palmitoylierung hindeutet
9.1.9. Calcium-Calmodulin-abhängige Proteinkinase (CaMK) reguliert DAT
CaMK bindet an C-Ausläufer-Aminosäurenreste 612-617.3
CaMK bindet am DAT-C-Terminus.
Die Bindung von CaMKIIalpha (Ca(2+)/Calmodulin-abhängige Proteinkinase II (CaMKII)) an den C-Terminus der DAT scheint die Phosphorylierung des N-Terminus der DAT zu erleichtern und den Amphetamin-induzierten DAT-Dopamin-Efflux zu vermitteln.48
CaMKIIalpha
- bindet an den distalen C-Terminus von DAT
- kolokalisiert mit DAT in dopaminergen Neuronen
- phosphoryliert Serine im distalen DAT-N-Terminus.
- Eine Mutation dieser Serine beseitigte die stimulierenden Wirkungen von CaMKIIalpha.
- Eine Mutation des C-Terminus der DAT, die die Bindung von CaMKIIalpha beeinträchtigt, beeinträchtigte auch den Amphetamin-induzierten DAT-Dopamin-Efflux
- Der CaMKII-Inhibitor KN93 verringerte den Amphetamin-induzierten DAT-Dopamin-Efflux-
9.1.10. α-Synuclein (α-Syn) erhöht DAT-Aktivität
Bindet an Aminosäurenreste 606-6203 des C-Ausläufers.4945
Alpha-Synuclein-Bindung an den C-Terminus des DAT beschleunigt:4550
- die DAT-Dopaminwiederaufnahme
- die Dopamin-induzierte zelluläre Apoptose
9.1.11. Flotillin 1 (Flot1) erhöht DAT-DA-Efflux
Flotillin-1/Reggie-2 (Flot1) ist ein Membran-Raft-Protein. Seine Bindungsstellen am DAT sind unbekannt.
Flot137
- wird benötigt, um DAT zu lokalisieren
- ist für die PKC-regulierte Internalisierung (Endozytose) des DAT erforderlich
- S315A-Mutation von Flot1 kann die DAT-Endozytose nicht induzieren
- nach anderer Auffassung ist Flot1 für DAT-Endozytose nicht erforderlich39
- ist für den Amphetamin-induzierten Dopamin-Efflux in DAT wesentlich
- eine Deletion von Flot1 verringerte den Amphetamin-induzierten Dopamin-Efflux
- ist für die Dopamin(wieder)aufnahme nicht wesentlich
9.1.12. Protein-Protein-Wechselwirkungen regulieren DAT
Direkte Protein-Protein-Wechselwirkungen durch intrazelluläre Proteine wie:
9.1.13. βγ-Untereinheiten des G-Proteins hemmen DAT-Aktivität
βγ-Untereinheiten von G-Proteinen sind intrazelluläre Signalmoleküle, die durch Interaktionen mit Enzymen und Ionenkanälen eine Vielzahl von physiologischen Prozessen regulieren.
Gβγ-Untereinheiten regulieren die DAT-Aktivität über eine direkte Interaktion zwischen dem intrazellulären Carboxy-Terminus von DAT und Gβγ.
Eine Überexpression der Gβγ-Untereinheit oder des Gβγ-Aktivators mSIRK bewirkten eine schnelle Hemmung der DAT-Aktivität in heterologen Systemen. Eine Gβγ-Aktivierung durch mSIRK hemmte zudem auch die Dopaminaufnahme in Synaptosomen des Gehirns und die Dopamin-Clearance aus dem Striatum.4
9.1.14. Synaptogyrin-3 erhöht DAT-Aktivität
Das synaptische Vesikelprotein Synaptogyrin-3 und DAT sind an präsynaptischen striatalen Terminals kolokalisiert. Synaptogyrin-3 interagiert mit dem N-Terminus des DAT. Die Expression von Synaptogyrin-3 korrelierte mit der DAT-Aktivität
- in PC12- und MN9D-Zellen
- nicht in den nicht-neuronalen HEK-293-Zellen
Der VMAT2-Inhibitor Reserpin hebt die Wirkung von Synaptogyrin-3 auf die DAT-Aktivität auf.52
9.1.15. Membran-Rafts beeinflussen DAT-Aktivität
Membran-Rafts sind kleine (10-200 nm), heterogene, hochdynamische, mit Sterolen (z.B. Cholesterin) und Sphingolipiden angereicherte Domänen, die zelluläre Prozesse kompartimentieren (wie z. B. die Rezeptorsignalisierung durch Segregation bestimmter Proteinpopulationen). Kleine Rafts können manchmal durch Protein-Protein- und Protein-Lipid-Wechselwirkungen stabilisiert werden und größere Plattformen bilden.53
DATs sind recht gleichmäßig zwischen Membran-Raft- und Nicht-Raft-Domänen verteilt.
Die Raft-Verteilung beeinflusst die DAT-Regulierung erheblich. Rafts sind die primären Orte:3
- der PKC-stimulierten DAT-Phosphorylierung
- der Interaktion mit Flot1
- der Interaktion mit Syn1A
- der Interaktion mit Rin1
- der PKC-stimulierten Endozytose (unklar)
Ein falsches Targeting von DAT könnte daher der hiervon abhängigen Prozesse beeinflussen, wie - Efflux
-
Down-Regulation
Die Ausrichtung von DAT auf Raft - korreliert mit dem Cholesteringehalt der Membran
- erfordert Flot1
- Flot1 ist ein Protein, das palmitoylierte Membran-Raft organisiert
- bewirkt geringere laterale Membranmobilität der DAT
9.1.16. Cholesterin erhöht DAT-Aktivität
Cholesterin ist erforderlich für
- DA-Transportaktivität54
- AMPH-stimulierten Efflux54
- PKC-stimulierte Herunterregulation des DAT
- Veränderungen des DAT-Konformationsgleichgewichts.
Cholesterinmangel kann daher die DAT-Aktivität (Aufnahme wie Efflux) verringern.
Cholesterinchelation verringert die Affinität von DAT für Dopamin.55, ohne den DAT-Efflux oder die Aufnahmerate zu verändern.56
Die von Cholesterin beeinflussten genannten Prozesse sind an der DAT-Phosphorylierung und der Interaktion mit Bindungspartnern beteiligt, was zum Teil auf die DAT-Lokalisierung im Membran-Raft zurückgeführt wird3 und zum Teil auf das Vorhandensein von Raft-unabhängigen Mechanismen.
Cholesterin interagiert mit vielen Proteinen über Cholesterol Recognition Amino Acid Consensus (CRAC)-Motive (Sequenz; L/V-X(1-5)-Y-X(1-5)-K/R). Diese binden Sterol über hydrophobe, aromatische und H-bindende Wechselwirkungen. DAT enthält sechs CRAC-Motive, von denen nicht bekannt ist, ob sie funktionell sind.
Ob eine Interaktion von DAT mit Cholesterin über diese Motive zur Raft-Partitionierung des DAT beiträgt3 ins unklar.54
9.1.17. Cannabinoide hemmen Dopaminwiederaufnahme
Cannabinoide hemmen die Wiederaufnahme von57
- Adenosin (stärker)
- Dopamin (schwächer)
im Striatum. Dies betrifft eine große Anzahl endogener wie exogener Cannabinoid-Liganden. Die maximale Stärke der Wiederaufnahmehemmung entsprach häufig der des Dopamin-Wiederaufnahmehemmers GBR12783 und des äquilibrativen Nukleosid-Wiederaufnahmehemmers Dipyridamol. Die Hemmung erfolgte offenbar nicht durch den Cannabinoid-1-Rezeptor.
9.1.18. N-Glykane erhöhen DAT-Aktivität
Der DAT ist ein Glykoprotein mit drei N-Glykosylierungsstellen in der zweiten extrazellulären Schleife.
Eine Blockade der DAT-N-Glykosylierung verringerte die DAT an der Oberfläche wie intrazellulär. Dennoch scheint die Glykosylierung für die DAT-Expression nicht wesentlich zu sein. Nicht-glykosylierte DAT waren an der Oberfläche weniger stabil und zeigten eine deutlich verstärkte Endozytose. Nicht-glykosylierte DAT transportierten Dopamin nicht so effizient wie die Wildtyp-DAT. Die Blockade der N-Glykosylierung verstärkte die Wirksamkeit kokainähnlicher Drogen bei der Hemmung der Dopaminaufnahme. Nicht-glykosylierte DAT an der Zelloberfläche zeigten eine deutlich reduzierte katalytische Aktivität und eine veränderte Empfindlichkeit gegenüber Wiederaufnahmehemmern im Vergleich zum Wildtyp.58
Die Glykosylierung des DAT korreliert mit der Anfälligkeit dopaminerger Zellen im Mittelhirn bei der Parkinson.59
Eine kleine Studie fandbei ADHS:60
- verringerte di-/triantennäre N-Glykane mit bisecting N-Acetylglucosamin (GlcNAc)
- eine erhöhte antennäre Fucosylierung
- eine verringerte α2-3-Sialylierung
9.1.19. DHEA blockiert die Dopamin-Aufnahme in striatalen Synaptosomen
DHEA blockiert die Dopamin-Aufnahme in striatalen Synaptosomen.6162
9.1.20. DAT-Genvarianten
Es sind etliche DAT-Genpolymorphismen bekannt. Diese können die Aktivität und das sonstige Verhalten der DAT stark beeinflussen.
Mehr hierzu unter SLC6A3, DAT1, Dopamin-Transporter-Gen (Chromosom 5p15.3; 10-R-Allel, VNTR) im Beitrag Gene als genetische Kandidaten bei ADHS mit plausiblem Wirkweg auf ADHS
9.1.21. Frühkindliches enriched environment verringert DAT im mPFC
Frühkindliches enriched environment bewirkte bei Ratten eine um 35 % verringerte maximale Dopaminwiederaufnahme bei um 39 % verringerter DAT-Expression im mPFC (im Vergleich zu Ratten, die unter verarmten Bedingungen aufgezogen wurden). Es fanden sich keine Unterschiede in Nucleus accumbens oder Striatum.63
9.1.22. DAT-Regulation durch Autophagie
Autophagie moduliert möglicherweise die Wiederaufnahme von Dopamin durch selektiven Abbau von DAT.64
Dabei wird die folgende Kausalkette beschrieben:
- Eine Fehlfunktion des lysosomalen Autophagie bewirkt
- einen verringerten DAT-Abbau, dadurch
- höhere Anzahl aktiver DAT
- hohe Dopamin-Wiederaufnahme
- niedriges extrazelluläres / hohes intrazelluläres Dopamin
- exzessiv hohe Cytoplasma-Dopamin-Spiegel
- hohe Dopamin-Oxidationsprozesse
- oxidativer Stress
- Neurodegeneration
9.1.23. Nurr1 und Pitx3 aktivieren DAT-Promotor-Transkription
Nurr1 und Pitx3 aktivieren kooperativ die Transkription von DAT-Promotorsequenzen.65
Murine und menschliche DAT-Promotorsequenzen beinhalten benachbarte Nurr1- und Pitx3-Bindungsstellen innerhalb des proximalen DAT-Promotors.
9.1.24. DAT-Regulation durch Epigenetik
Die DAT-Expression wird durch epigenetische Modulation (z.B. Histonacetylierung und DNA-Methylierung) beeinflusst:66 Leider gaben die von Wu et al zu den folgenden Informationen angegebenen Quellen durchgängig nicht die Darstellung wieder und konnten daher nicht überprüft werden. Die Aussagen sind daher mit Vorsicht zu betrachten.
Histonacetylierung:
- Der DAT-Promotor verfügt über keine TATA-Box, anders als die meisten Housekeeping-Gene. Das macht den DAT besonders anfällig für epigenetische Beeinflussung. Daher könnte die Initiierung der DAT-Transkription stark von der Bildung des TATA-Box-bindenden Proteins (TBP) abhängen. TBP wird in erster Linie durch Histonacetylierung reguliert.67
- Valproat, ein HDAC-Inhibitor, kann DAT mRNA- und Proteinspiegel in menschlichen SK-N-AS-Zellen erhöhen.
- Eine Gabe von DNMT-Inhibitoren erhöhte die DAT-mRNA-Spiegel in menschlichen Neuroblastomzellen leicht. HDACs erhöhten die DAT-Expression in menschlichen Neuroblastomzellen stärker.
- Ontogenie-Studien an DAT-mRNA vom postnatalen Tag 0 bis zum Tag 182 zeigten eine signifikant erhöhte H3K9/K14-Acetylierung im DAT-Promotor während dieses Zeitraums. In der Zwischenzeit war die Bindung von Nuclear Receptor-Related 1 Protein (Nurr1) und Paired Like Homeodomain 3 (Pitx3) an den DAT-Promotor ebenfalls altersbedingt erhöht.
DNA-Methylierung:
- Die DNA-Methylierung des DAT-Promotors steigt mit dem Alter.
9.2. Dopamin-Autoregulation
9.2.1. D2-Autorezeptoren
D2-Autorezeptoren finden sich insbesondere im Striatum, weniger im Kortex.
Extrazelluläres Dopamin dockt an präsynaptische D2-Autorezeptoren an. Diese hemmen
- direkt
- indirekt durch nachgeschaltete Regulation69
- die Expression von Tyrosinhydroxylase
- langsamer, langanhaltender Mechanismus
- Downregulation der Tyrosinhydroxylase nach längerer Autorezeptor-Aktivierung bewirkt
- verringerte Füllung der präsynaptischen Dopaminvesikel72
- Quinpirol, ein D2-Rezeptor-Agonist, hemmt die TH-Aktivität und verringert die Quantengröße von K+-evozierten Freisetzungen um 40 bis 50 %
- L-DOPA steigert die DA-Synthese und die quantitative Größe in DA-Zellen unabhängig von TH und verhindert die Wirkung von Quinpirol auf die quantitative Größe von DA
- Die D2-Wirkung auf die Verringerung der Quantengröße wird wahrscheinlich durch eine verringerte TH-Affinität für seinen Cofaktor Tetrahydropbiopterin (BH4) vermittelt, indem ein cAMP-abhängiger Signalpfad blockiert wird, der die TH-Phosphorylierung vermittelt
- verringerte Füllung der präsynaptischen Dopaminvesikel72
- veränderte Verteilung und Expression des vesikulären Monoamintransporters (VMAT)
- die Expression des DAT auf der Plasmamembran
- die Aktivität des DAT
- sekundenschnellen Rückkopplungshemmung der Dopaminfreisetzung
- die Expression von Tyrosinhydroxylase
Räumliche Anordnung von Autorezeptoren:69
- Axonale Autorezeptoren steuern die Synthese, Freisetzung und Aufnahme von Dopamin.
- Mittelhirn-Autorezeptoren vermitteln die Übertragung, die das Feuern der Dopamin-Neuronen steuert.
- Soma-Autorezeptoren verringern die Feuerrate von dopaminergen Neuronen
Im Ergebnis hemmen D2-Rezeptor-Agonisten in vivo die Dopaminausschüttung und Dopaminsignalisierung, während D2-Rezeptor-Antagonisten diese verstärken.69 D2-Antagonisten verändern die Freisetzung von evoziertem endogenem Dopamin allerdings nicht, wenn die Freisetzung durch einen singulären Reiz ausgelöst wird. Scheinbar genügt auch die tonische Hintergrund-Dopaminfeuerung nicht, um extrazelluläres Dopamin so weit zu erhöhen, dass die D2-Autorezeptoren die DAT-Reguliation aktivieren. D2-Autorezeptoren scheinen nur bei übermäßiger Aktivierung oder während längerer Stimulationszyklen die DAT-Dopamin-Aufnahme zu beschleunigen.73 Längere Dopamin-Interstimulusintervalle (5-30 sec) wurde nicht durch D2-Autorezeptor-Aktivierung reguliert.23
Die D2-vermittelte Autoinhibition der Dopamin-Freisetzung betraf mithin nur phasische Dopamin-Bursts von Intervallen unter 5 Sekunden, war ∼500 msec nach der Stimulation am größten und hielt bis zu 5 Sekunden lang an.23
D2-Autorezeptoren halten das phasische Dopaminsignal sauber und konstant.
D2-Autorezeptoren bewirkten bei einem Burst aus 5 PPD-Signalen höhere (gleichbleibende) Amplituden des Hauptsignals und verhindern ein Nachschwingen des Dopaminsignals, sodass die Hauptsignale besser vom Nicht-Signal zu unterscheiden sind (vgl. Schmitz et al. 2002 Grafik 7).23
D2-Autorezeptoren verhindern bei einer Burst-Signalreihe, dass die Amplitudenspitzen des Hauptsignals sich immer weiter erhöhen. Wurden die D2-Autorezeptoren von Wildtyp-Mäusen durch den D2-Antagonisten Sulpirid gehemmt, stieg bei einer Signalreihe von 10 PPD-Signalen die Amplitude des Einzelsignals immer weiter an, bis fast zur doppelten Höhe.23 Dies trat nur bei Signalen im Subsekundenbereich auf (hier: 20 Hz), nicht bei Signalen im Sekundenabstand. Ein leichter Anstieg trat bereits beim zweiten Impuls zu beobachten, was auf einen (wenn auch unvollständigen) Beginn der Wirkung von D2-Autorezeptoren auf die Dopamin-Freisetzung innerhalb von 50 ms hindeutet.
Die D2-Autoinhibition war23
- maximal
- zwischen 150 und 300 ms nach der Stimulation in vivo
- 500 ms nach Stimulation in vitro
- dauerte
- ∼600 ms in vivo
- bis 5 Sekunden in vitro
Mesokortikale VTA-Dopamin-Neuronen, die in den präfrontalen Kortex projizieren, weisen nur wenige D2-Rezeptoren und GIRK-Kanäle auf und unterliegen daher keiner D2-Autorezeptor-vermittelten Dopamin-Hemmung.7475
Während D2Long möglicherweise bei Heterorezeptoren überwiegen, können sowohl D2Short als auch D2Long als Autorezeptoren auf Dopamin-Neuronen dienen.69
Ob D2-Autorezeptoren eine deutlich höhere Affinität für Dopamin haben als Heterorezeptoren, ist zumindest fraglich. Stattdessen könnte auch eine große Anzahl von D2-Autorezeptoren im Striatum der Grund sein, warum auch geringe Konzentrationen von Dopamin-Agonisten eine Hemmung der Dopaminfreisetzung bewirken.69
D2-Autorezeptoren regulieren vornehmlich die exozytotische Freisetzung von Dopamin aus Axon-Endigungen. Freigesetztes Dopamin aktiviert die Autorezeptoren, was die Wahrscheinlichkeit der Dopaminfreisetzung bei einer nachfolgenden präsynaptischen Stimulation verringert. Die durch S2-Autorezeptoren ausgelöste Hemmung dauert zwischen einigen hundert Millisekunden und mehreren Sekunden.
Selektive D2-Antagonisten erhöhen das extrazelluläre DA im mPFC deshalb nicht messbar, weil dieses durch NET umgehend wiederaufgenommen wird. Bei inaktivierten NET zeigte der D2-Antagonist Racloprid eine Erhöhung des extrazellulären DA im mPFC.68
D2-Autorezeptoren beeinflussen die DAT geschlechtsspezifisch.76
9.2.2. D3-Autorezeptoren: wenig Bedeutung
Während sowohl D2- als auch D3-Rezeptoren auf Dopamin-Neuronen vorhanden sind, spielt der D3-Rezeptor wohl nur eine geringe funktionelle Rolle als Autorezeptor. Der überwiegende Teil der Autofeedback-Hemmung dürfte durch den D2-Rezeptor vermittelt werden.69 Auf nigrostriatalen Dopaminneuronen (im dorsalen Striatum) finden sich keine D3-Autorezeptoren.23
9.2.3. Dopaminwippe PFC / Striatum
9.2.3.1. Niedriges tonisches Dopamin = hohes (“enthemmtes”) phasisches Dopamin im Striatum
Heinz stellt die Hypothese auf, dass eine verringerte (glutamaterg vermittelte) tonische Dopaminfreisetzung im Striatum mit einer enthemmten phasischen Dopaminfreisetzung korreliere.77 So führt Dopaminmangel im PFC unter anderem zu einer erhöhten Reaktion mesolimbischer dopaminerger Nervenzellen auf Stress.78
Abnorm niedriges tonisches extrazelluläres Dopamin führt zu einer Upregulation der Autorezeptoren, sodass das stimulierungsbedingte phasische Dopamin verstärkt wird. Hohes phasisches Dopamin soll dabei die hohe Sensibilität der Betroffenen gegenüber externen Reizen erklären. Stimuli, die eine moderate Erregung des Gehirns hervorrufen, bewirken eine gute Leistung, während zu geringe oder zu starke Stimuli die kognitive Leistung beeinträchtigen. Starke Reize können die Aufmerksamkeit leicht stören, während eine reizarme Umgebung eine geringe Erregung verursache, die typischerweise durch Hyperaktivität kompensiert wird.
Die Autoren berichten weiter über stochastische Resonanz. Stochastische Resonanz bedeutet, dass ein moderates Rauschen die Reizunterscheidung und die kognitive Leistung erleichtert. Computergestützte Modellierung zeigte, dass bei ADHS mehr Rauschen erforderlich ist, damit stochastische Resonanz in dopaminarmen neuronalen Systemen auftritt. Diese Vorhersage werde durch empirische Daten unterstützt.7980
Unter akutem Stress scheinen die Dopaminspiegel von PFC und Striatum auseinanderzufallen. Ratten zeigten bei elektrischen Schlägen einen Dopaminanstieg im PFC auf das doppelte, während er im Striatum lediglich um 25 % und Nucleus accumbens um 39 % anstieg.81 Eine andere Untersuchung fand nach wiederholtem Stress verringerte Dopaminspiegel im Striatum, leicht verringerte Dopaminspiegel im PFC, unveränderte Dopaminspiegel im Nucleus accumbens und ventralen Tegmentum sowie verringerte Dopaminspiegel im ventrolateralen Mittelhirn.82
So wie Kokain oder Amphetamingabe (als Droge, nicht als Medikament) eine Sensitivierung für nachfolgende Stressreaktionen bewirkt, kann auch wiederholter Stress die nachfolgende Reaktion auf Kokain verstärken. Diese Sensitivierung tritt bei Tieren, die aufgrund einer Entfernung der Nebenniere keine Glucocorticoide ausschütten können, nicht auf, sodass sie durch eine stressbedingt erhöhte Glucocorticoid-Ausschüttung vermittelt werden könnte.8384858687
9.2.3.2. Hohes tonisches Dopamin = niedriges phasisches Dopamin im Striatum
Normalerweise führt ein hoher extrazellulärer Dopaminspiegel dazu, dass die durch Stimuli ausgelösten phasischen Dopaminantworten über Autorezeptoren herunterreguliert werden.79 So hemmt tonisches (extrazelluläres) Dopamin im Striatum die phasische Dopaminfreisetzung durch Aktivierung der D2-Autorezeptoren. Die D2-Autorezeptoren werden aktiviert mittels:88
- Dopaminausschüttung in den Extrazellulärraum aufgrund Stimulation von Glutamatrezeptoren in der Nähe der Autorezeptoren
- Diffusion von Dopamin nach phasischer Ausschüttung aus dem synaptischen Spalt in den Extrazellulärraum
- die stellt eine selbsthemmende Feedbackschleife dar
9.2.3.3. Extrazelluläres Dopamin aktiviert phasisches Dopamin im PFC
Im PFC soll demgegenüber (extrazelluläres) Dopamin die phasische Dopaminfreisetzung fördern, indem hohes extrazelluläres Dopamin die Aktivierung der Pyramidenzellen erhöht und verlängert. Dies korreliert mit einer geringen Bedeutung der hemmenden D2-Autorezeptoren im PFC.88
9.2.4. D3-Rezeptoren reduzieren extrazelluläres Dopamin im mPFC
D3-Rezeptor-Agonisten reduzierten die DA-Freisetzung und die extrazellulären DA-Spiegel im mPFC/PFC.89
9.2.5. D1-Rezeptoren reduzieren extrazelluläres Dopamin im mPFC
D1-Rezeptor-Agonisten90 wie Apomorphin91 reduzierten die DA-Freisetzung und die extrazellulären DA-Spiegel im mPFC.
9.2.6. D2-Heterorezeptoren regulieren Dopamin im Striatum
Studien an autoDrd2KO-Mäusen zeigten, dass nicht nur D2-Autorezeptoren, sondern auch D2-Heterorezeptoren (also D2-Rezeptoren auf nicht-Dopamin-Neuronen) an der Dopamin-Regulation beteiligt sind. Dieser D2-Heterorezeptor-vermittelte Mechanismus wirkt auf Neuronen im SNc, die ins dorsale Striatum DSt projizieren stärker als auf Neuronen im VTA, die in den NAc-Kern projizieren (DA-Überlauf DSt: 37 %, NAc-Kern: 59 %, jeweils im Vergleich zu Wildtyp-Mäusen). D2R-Signale scheinen somit mesolimbische und nigrostriatal vermittelte Funktionen unterschiedlich zu regulieren.92
9.3. Externe Dopamin-Regulation
9.3.1 Externe Dopamin-Regulation direkt an Terminals
Die Freisetzung von Dopamin kann auch lokal an den Terminals selbst gesteuert werden. Möglicherweise wird die Dynamik der Dopaminfreisetzung im Zusammenhang mit der Kodierung von Belohnungswerten weitgehend durch lokale Kontrolle reguliert, während das Feuern der Dopaminzellen gleichzeitig wichtige Belohnungsvorhersagefehler-ähnliche Signale für das Lernen liefert.93 Die unmittelbare Steuerung von DA an den Terminals kann räumlich-zeitliche DA-Muster ergeben, die von den Zellkörper-Dornen unabhängig sind.
9.3.1.1. Amygdala reguliert Dopamin direkt an Terminals
Die basolaterale Amygdala kann die Dopaminfreisetzung im Nucleus accumbens unmittelbar beeinflussen, selbst bei inaktivierter VTA.94 Eine Inaktivierung der basolateralen Amygdala verringert die Dopamin-Freisetzung im Nucleus accumbens und damit das entsprechend motivierte Verhalten, unabhängig von der dopaminergen Feuerung durch das VTA.95
9.3.1.2. Glutamat, Acetylcholin, Opioide regulieren Dopamin direkt an Terminals
Dopamin-Terminals verfügen über Neurotransmitter-Rezeptoren für
- Glutamat
- Acetylcholin
- Opioide
9.3.2. N-Glykane und DRD2, DRD3
Der DRD2 unterliegt der N-Glykosylierung. N-Glykane am N-Terminus des DRD2 unterdrücken die Internalisierung des Rezeptors in das Zytosol, da sie für die Interaktion mit Caveolin-1 erdorderlich sind. Caveolin-1 hemmt die Endozytose. N-Glykane sind an der Desensibilisierung und Expression des DRD3 auf der Zelloberfläche sowie an dessen Clathrin-abhängiger Internalisierung beteiligt.102
9.4. Regelmechanismen nach Neurotransmittern / Hormonen etc.
9.4.1. Dopamin - Dopamin Autoregulation
9.4.1.2. D2-Autorezeptoren hemmen phasisches Dopamin
ZU D2-Autorezeptoren siehe in diesem Beitrag oben.
9.4.1.3. Dopaminwippe PFC / Striatum
9.4.1.3.1. Niedriges tonisches Dopamin = hohes (“enthemmtes”) phasisches Dopamin im Striatum
Heinz stellt die Hypothese auf, dass eine verringerte (glutamaterg vermittelte) tonische Dopaminfreisetzung im Striatum mit einer enthemmten phasischen Dopaminfreisetzung korreliere.77 So führt Dopaminmangel im PFC unter anderem zu einer erhöhten Reaktion mesolimbischer dopaminerger Nervenzellen auf Stress.78
Abnorm niedriges tonisches extrazelluläres Dopamin führt zu einer Upregulation der Autorezeptoren, sodass das stimulierungsbedingte phasische Dopamin verstärkt wird. Hohes phasisches Dopamin soll dabei die hohe Sensibilität der Betroffenen gegenüber externen Reizen erklären. Stimuli, die eine moderate Erregung des Gehirns hervorrufen, bewirken eine gute Leistung, während zu geringe oder zu starke Stimuli die kognitive Leistung beeinträchtigen. Starke Reize können die Aufmerksamkeit leicht stören, während eine eine reizarme Umgebung eine geringe Erregung verursache, die typischerweise durch Hyperaktivität kompensiert wird.
Die Autoren berichten weiter über stochastische Resonanz. Stochastische Resonanz bedeutet, dass ein moderates Rauschen die Reizunterscheidung und die kognitive Leistung erleichtert. Computergestützte Modellierung zeigte, dass bei ADHS mehr Rauschen erforderlich ist, damit stochastische Resonanz in dopaminarmen neuronalen Systemen auftritt. Diese Vorhersage werde durch empirische Daten unterstützt.7980
Unter akutem Stress scheinen die Dopaminspiegel von PFC und Striatum auseinanderzufallen. Ratten zeigten bei elektrischen Schlägen einen Dopaminanstieg im PFC auf das doppelte, während er im Striatum lediglich um 25 % und Nucleus accumbens um 39 % anstieg.81 Eine andere Untersuchung fand nach wiederholtem Stress verringerte Dopaminspiegel im Striatum, leicht verringerte Dopaminspiegel im PFC, unveränderte Dopaminspiegel im Nucleus accumbens und ventralen Tegmentum sowie verringerte Dopaminspiegel im ventrolateralen Mittelhirn.82
So wie Kokain oder Amphetamingabe (als Droge, nicht als Medikament) eine Sensitivierung für nachfolgende Stressreaktionen bewirkt, kann auch wiederholter Stress die nachfolgende Reaktion auf Kokain verstärken. Diese Sensitivierung tritt bei Tieren, die aufgrund einer Entfernung der Nebenniere keine Glucocorticoide ausschütten können, nicht auf, sodass sie durch eine stressbedingt erhöhte Glucocorticoid-Ausschüttung vermittelt werden könnte.8384858687
9.4.1.3.2. Hohes tonisches Dopamin = niedriges phasisches Dopamin im Striatum
Normalerweise führt ein hoher extrazellulärer Dopaminspiegel dazu, dass die durch Stimuli ausgelösten phasischen Dopaminantworten über Autorezeptoren herunterreguliert werden.79 So hemmt tonisches (extrazelluläres) Dopamin im Striatum die phasische Dopaminfreisetzung durch Aktivierung der D2-Autorezeptoren. Die D2-Autorezeptoren werden aktiviert mittels:88
- Dopaminausschüttung in den Extrazellulärraum aufgrund Stimulation von Glutamatrezeptoren in der Nähe der Autorezeptoren
- Diffusion von Dopamin aus dem synaptischen Spalt nach phasischer Ausschüttung in den Extrazellulärraum
- Die Aktivierung der hemmenden Dopaminautorezeptoren durch Dopamindiffusion aus dem synaptischen Spalt in den Extrazellulärraum stellt eine selbsthemmende Feedbackschleife dar
9.4.1.4. e-DA aktiviert phasisches DA im PFC
Im PFC soll demgegenüber (extrazelluläres) Dopamin die phasische Dopaminfreisetzung fördern, indem hohes extrazelluläres Dopamin die Aktivierung der Pyramidenzellen erhöht und verlängert. Dies korreliert mit einer geringen Bedeutung der hemmenden D2-Autorezeptoren im PFC.88
9.4.1.5. DA-Regulation direkt an Terminals
Die Freisetzung von Dopamin kann auch lokal an den Terminals selbst gesteuert werden und dadurch räumlich-zeitliche Dopamin-Muster ergeben, die von den Zellkörper-Spikes unabhängig sind. Möglicherweise wird die Dynamik der Dopaminfreisetzung im Zusammenhang mit der Codierung von Belohnungswerten weitgehend durch lokale Kontrolle reguliert, während das Feuern der Dopaminzellen gleichzeitig wichtige Belohnungsvorhersagefehler-ähnliche Signale für das Lernen liefert.93
9.4.1.5.1. Amygdala reguliert DA direkt an Terminals
Die basolaterale Amygdala kann die Dopaminfreisetzung im Nucleus accumbens unmittelbar beeinflussen, selbst bei inaktivierter VTA.94 Eine Inaktivierung der basolateralen Amygdala verringert die DA-Freisetzung im Nucleus accumbens und damit das entsprechend motivierte Verhalten, unabhängig von der dopaminergen Feuerung durch das VTA.95
9.4.1.5.2. Glutamat, Acetylcholin, Opioide regulieren DA direkt an Terminals
Dopamin-Terminals verfügen über Neurotransmitter-Rezeptoren für
9.4.1.6. D3-Rezeptoren reduzieren e-DA im mPFC
D3-Rezeptor-Agonisten reduzierten die DA-Freisetzung und die extrazellulären DA-Spiegel im mPFC/PFC.89
9.4.1.7. D1-Rezeptoren reduzieren e-DA im mPFC
D1-Rezeptor-Agonisten90 wie Apomorphin91 reduzierten die DA-Freisetzung und die extrazellulären DA-Spiegel im mPFC.
9.4.2. Noradrenalin
9.4.2.1. e-NE beeinflusst DA-Aufnahme und e-DA
Da DAT im PFC selten sind und DA im PFC vornehmlich durch NET wiederaufgenommen wird, konkurrieren DA und NE im PFC um die Wiederaufnahme durch den NET.
Daraus wurde angenommen, dass hohes extrazelluläres NE die DA-Aufnahme verringert, was zu erhöhtem extrazellulären DA führen würde. Umgekehrt würde niedriges extrazelluläres NE die DA-Aufnahme erleichtern, was zu verringertem extrazellulären DA-Spiegel führte.
Zudem sollen α2-Adreno-Autorezeptoren die Spiegel von NE und DA beeinflussen, unter anderem, indem sie die Katecholaminfreisetzung aus dopaminergen Terminals kontrollieren, sodass ihre Blockade und Stimulation zu einem Anstieg bzw. einer Abnahme von DA im PFC führen würde.
Im Gegensatz zu diesen Hypothesen scheint extrazelluläres DA im PFC nicht nur von dopaminergen, sondern auch von noradrenergen Terminalen abzustammen, wo DA sowohl als Vorläufer als auch als Co-Transmitter von NE fungiert. Passend hierzu verhinderte eine zentrale noradrenerge Denervierung den durch den α2-Adrenozeptor-Antagonisten Atipamezol ausgelösten Anstieg des extrazellulären DA im mPFC, was darauf hindeutet, dass noradrenerge Terminals die primäre Quelle des durch α2-Adrenozeptor-Antagonisten im mPFC freigesetzten DA sind.68
9.4.2.2. α2-Adreno-Autorezeptoren hemmen DA im PFC
α2-Adreno-Autorezeptoren hemmen die Dopaminausschüttung im PFC.68
9.4.2.3. α2-Adrenozeptoren hemmen DA im Nucleus accumbens
Der Nucleus accumbens erhält erheblichen noradrenergen Input.103104 Dieser Input hemmt die Dopamin-Freisetzung über α2-Adrenozeptoren.105106
Das noradrenerge System beeinflusst daher das dopaminerge System im Nucleus accumbens103, was ADHS-Symptome beeinflussen kann.
9.4.3. Glutamat
Glutamat erhöht tonisches Dopamin im Striatum
Bei Dopamin soll die phasische Freisetzung aufgrund eintreffender Aktionspotentiale erfolgen, während die tonische Freisetzung durch glutamaterge Signale vom PFC zum Striatum ausgelöst wird.107108109 Eine tonische Dopaminfreisetzung im Striatum erfolge jedoch nur bei ungewöhnlich hohen Glutamatspiegeln.110 Der selbe Hauptautor bestätigte indes in einer weiteren Studie, dass Glutamat einen Einfluss auf die tonische Dopaminerhöhung im Striatum durch Dopaminwiederaufnahmehemmer habe. Glutamatantagonisten verringerten die Wirkung der Dopaminerhöhung durch Dopaminwiederaufnahmehemmer.111
Ein selektiver mGlu5R-Agonist hemmt die durch D2R-Agonisten induzierte motorische Aktivierung. mGlu5R-Antagonisten heben dagegen die Wirkung von D2R-Antagonisten auf. A2AR- und mGlu5R-Agonisten verstärken sich gegenseitig, ebenso wie A2AR- und mGlu5R-Rezeptorantagonisten. Diese Wechselwirkungen bilden die Grundlage für die Anwendung von A2AR-Antagonisten (und möglicherweise auch mGlu5R-Antagonisten) bei Parkinson.112
Signale aus dem laterodorsalen tegmentalen Nukleus (Teil des Stammhirns) lösen phasische Dopaminreaktionen im VTA aus, die wiederum mit Aktivierung von Glutamatrezeptoren im ventralen Tegmentum (VTA) die extrasynaptische (basale/tonische) Dopaminfreisetzung u.a. im Nucleus accumbens (Teil des Striatums) erhöhen, was die Signale aus dem laterodorsalen tegmentalen Nukleus herunterregelte. Damit führt ein hoher basaler/tonischer Dopaminspiegel im Nucleus accumbens zu einem verringerten phasischen Dopaminausstoß. Ein D2-Rezeptor-Agonist verringerte die glutamaterg vermittelte Signalverringerung aus dem laterodorsalen tegmentalen Nukleus, sodass phasisches Dopamin wieder anstieg und tonisches Dopamin zurückging. Ein hoher basaler/tonischer Dopaminspiegel kann somit die durch den laterodorsalen tegmentalen Nukleus gesteuerte phasische Doopaminausschüttung hemmen. Glutamatrezeptoren wirken im VTA als Autorezeptoren, die dazu beitragen, bei hohem tonischem Dopamin den verringerten phasischen Dopaminspiegel zu stabilisieren. Das Zusammenspiel zwischen Autorezeptoren im VTA und D2-Autorezeptoren z.B. im Striatum steuert das funktionelle Gleichgewicht zwischen tonischem und phasischem Dopamin.113
9.4.3.1 Stickoxid erhöht via Glutamat tonisches Dopamin im Striatum
Weiter scheint Stickoxid im Striatum durch eine Erhöhung des glutamatergen Tonus den Dopaminspiegel zu erhöhen.114
Inwieweit hier Zusammenhänge mit den erhöhten Stickoxid-Blutplasmawerten bei ADHS bestehen, die durch MPH noch weiter erhöht werden,115 ist eine interessante Frage.
9.4.4. Acetylcholin
9.4.4.1. β2-Nikotinrezeptor-Agonisten verringern tonisches und erhöhen phasisches Dopamin im Striatum
9.4.4.1.1. Acetylcholin
Acetylcholin ist ein β2-Nikotinrezeptor-Agonist und beeinflusst die Dopaminausschüttung im Striatum.116
9.4.4.1.2. Nikotin
Nikotin ist ein β2-Nikotinrezeptor-Agonist. Nikotin verringert die tonische und erhöht die phasische Dopaminausschüttung im Nucleus Accumbens (Striatum).117
9.4.4.2. β2-Nikotinrezeptor-Antagonisten verringern phasisches Dopamin im Striatum
9.4.4.2.1. Dihydro-β-erythroidine (DHβE)
Dihydro-β-erythroidine (DHβE) ist ein pflanzlicher kompetitiver Antagonist von Nikotinrezeptoren. Es ist ein Inhibitor von nikotinischen Acetylcholin-Rezeptoren, die β2-Einheiten enthalten (β2* nAChRs; β2-Nikotinrezeptoren). DHβE verringert die phasische Dopaminausschüttung im dorsolateralen Striatum.117
Daraus folgt, dass die Erwartung von Belohnungen, die durch phasisches Dopamin im Striatum und noch mehr im Nucleus accumbens gesteuert wird, auch durch β2-Nikotinrezeptor-Agonisten - wie Nikotin - erhöht wird.
9.4.4.2.2. Eierstockhormone
Die Dopaminfreisetzung aus den Axonendigungen im NAc wird unabhängig von der somatischen Aktivität im VTA durch lokale regulatorische Mikroschaltkreise rasch moduliert. Die tonische (langsam und regelmäßig) und phasische (kurz, Burst/Spikes) Dopaminfreisetzung um NAc unterliegt einer starken Modulation durch cholinerge (ChAT) Interneuronen. Die ChAT signalisieren über α4β2*-haltige nikotinische Acetylcholinrezeptoren (nAChRs), die sich direkt an Dopaminterminalen befinden.
Die ChAT-Regulierung der Dopaminfreisetzung durch nAChRs ist bei Männern und Frauen grundlegend unterschiedlich.
Bei weiblichen Mäusen ist eine ChAT-Regulation der Dopaminfreisetzung durch α4β2*-nAChRs meist nicht vorhanden. Eine beeinträchtigte nAChR-Modulation der Dopaminfreisetzung wurde bei intakten (nicht-ovariektomierten) Weibchen nicht durch den Östrus-Zyklus beeinflusst. Bei ovariektomierten Weibchen wurde eine beeinträchtigte nAChR-Modulation der Dopaminfreisetzung jedoch wiederhergestellt. 17β-Estradiol (E2) erhöhte die Dopaminfreisetzung akut, was durch α4β2*-NAChRs-Antagonisten blockiert wurde. Weibchen zeigten eine geringere Wirkung von nAChR-Agonisten auf die Dopaminfreisetzung, was bei desensibilisierten Rezeptoren zu erwarten wäre. In Verhaltensstudien lernten männliche Mäuse schneller als intakte Weibchen, wenn ChAT-Interneuronen aktiviert waren.
Unabhängig vom Hormonzyklus beeinflussen zirkulierende Eierstockhormone die Fähigkeit von α4β2*-nAChRs auf Dopamin-Terminals, die Dopaminfreisetzung im NAc zu modulieren. Dies deutet darauf hin, dass geschlechtsspezifische Unterschiede in der ChAT-Regulation der Dopamin-Neurotransmission der geschlechtsabhängigen Differenzierung beim Belohnungslernen zugrunde liegen.118
9.4.4.3. Acetylcholin bewirkt phasische Dopaminausschüttung im Striatum
Acetylcholin-Neurone im Striatum können durch eine Aktivierung von Acetylcholin-Rezeptoren auf Dopamin-Axonen, ein Aktionspotenzial in den dopaminergen Axonen auslösen, das in der Folge eine phasische Dopaminausschüttungen an den dopaminergen Terminalen auslöst. Es bedarf dazu keines Signals aus dem dopaminergen Zellkern.119
Im Striatum sind 1 % bis 3 % der Neuronen tonisch aktive Interneuronen, die Acetylcholin (ACh) freisetzen. Die Axone der ACh-Neuronen sind mit den Axonen der Dopamin-Neuronen an vielen Stellen verflochten, wo Dopamin-Axone hohe Konzentrationen an nikotinischen ACh-Rezeptoren (nAChRs) aufweisen. Eine synchrone Aktivierung dieser ACh-Rezeptoren in den distalen dopaminergen Axonen durch Aktionspotenziale aus den ACh-Neuronen kann die Dopaminfreisetzung direkt steuern, also unabhängig von den Aktionspotenzialen aus den dopaminergen Somata im Mittelhirn.
9.4.4.4. Acetylcholin aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
Acetylcholin aktiviert dopaminerge Neuronen des VTA.120
Cholinerge Hirnstamm-Neuronen aktivieren nikotinische und muskarinische M5-Rezeptoren. Dies bewirkt:
- erhöhte Dopamin-Bursts in VTA
- Beeinflussung von Belohnungsprozessen/Sucht
9.4.5. TAAR1 hemmt Dopamin
Der TAAR1 (Trace Amine 1 Rezeptor) beeinflusst die Regulierung von Dopamin. VTA und Substantia nigra zeigen eine hohe Expression von TAAR1.121
TAAR1-Agonisten verringern die Feuerrate dopaminerger Neuronen im VTA.122123
Die Hemmung von TAAR1 verstärkt die dopaminerge Aktivität.123
Mehr hierzu im Beitrag => Spurenamine.
9.4.6. Adenosin hemmt Dopamin
Adenosinrezeptoren sind überall im Gehirn in der Nähe von Dopaminrezeptoren zu finden und eng mit diesen verbunden (teils sogar als Heteromere). Adenosin hemmt Dopamin, Adenosinantagonisten wie Koffein (Kaffee, Cola, Schwarztee) oder Theobromin (Kakao) erhöhen mithin Dopamin.
Mehr hierzu im Beitrag => Adenosin.
9.4.8. Casein Kinase 2 (CK2) reguliert Dopamin
Mäuse ohne CK2 zeigten hyperaktives Verhalten, das durch veränderte Dopaminwirkung vermittelt wurde.124
9.4.9. Zelluläres Prionprotein (PrP(C)) reguliert Dopamin
Zelluläres Prionprotein (PrP(C)) ist im Gehirn weitverbreitet. Es könnte die Neuroplastizität im Gehirn mittels des glutamatergen und serotonergen Systems regulieren. PrP(C) ist mit dopaminergen Neuronen und Synapsen im Striatum kolokalisiert.
Eine genetische Deletion von PrP(C) bewirkte125
- im Striatum
- Downregulation von Dopamin-D1-Rezeptoren
- Downregulation von DARPP-32
- im PFC
- verringerte Dopaminspiegel
(PrP(C)) scheint zu beeinflussen:125
- Dopaminsynthese
- Dopaminspiegel
- Dopaminrezeptordichte
- Signalwege in verschiedenen Hirnregionen
9.4.10. Östrogen und Östradiol fördern Dopamin im Striatum und PFC
Östrogen wirkt in Striatum und Nucleus accumbens über einen G-Protein-gekoppelten Membran-Östrogenrezeptor (GPER) schnell und direkt erhöhend auf die Dopaminfreisetzung und dopaminerg vermittelte Verhaltensweisen - nicht jedoch bei männlichen Ratten.126
Es besteht ein enger Zusammenhang zwischen Östrogenen und erhöhter Dopaminaktivität in Belohnungsstrukturen des Gehirns.127128
Die Wirkung von Östrogen auf Dopaminaktivität und Belohnungsmotivation scheint insbesondere im Striatum auch durch eine Bindung von Östradiol an membranständige Östrogenrezeptoren beeinflusst zu werden. Die geschlechtsabhängige Wirkung könnte aus einer geschlechtsabhängig ungleichen Verteilung der Rezeptoren resultieren.129130131
Während der Lutealphase (die durch hohe Östradiol- und Progesteronkonzentrationen geprägt ist) wurde eine größere Verfügbarkeit von D2-Bindungsstellen im Striatum berichtet.132 Daraus wurde auf eine verringerte Dopamin-Freisetzung während der hohen Östradiolphase als Ursache geschlossen.133
Der Östrogenspiegel beeinflusst zyklusabhängig die mesolimbische dopaminerge Aktivität (Freisetzung, Aufnahme und Transport).134
Der basale Dopaminspiegel im PFC ist bei Nagetieren:135
- am höchsten während des Östrus (fruchtbare Phase, entsprechend Ende der Follikelphase / Proliferationsphase mit der Ovulation beim Menschen, der mit einem sehr hohen Östrogenspiegel einhergeht)
- verringert während des Diöstrus am niedrigsten (entsprechend Mitte der Sekretionsphase bis Anfang der Proliferationsphase beim Menschen, unfruchtbarer Zeitraum)
- am niedrigsten während des Proöstrus, der Phase, in der der Östrogenspiegel typischerweise am höchsten ist (entsprechend zweite Hälfte der Proliferationsphase beim Menschen)
Dies korreliert jedoch wohl nur bedingt damit, dass manche Frauen mit ADHS unmittelbar vor der Menstruationsphase, also zum Ende der Lutealphase, höhere Dosen von ADHS-Medikamenten benötigen als in anderen Zyklusphasen.136 Zwar sinkt der Östrogenspiegel in dieser Zeit, jedoch findet sich der niedrigste Östrogenspiegel während der Menstruation (1. bis 4. Zyklustag) und in den ersten Tagen der Proliferationsphase (5. bis 14. Zyklustag). Für diese Zeiträume gibt es keine Berichte über einen zyklusbedingt erhöhten ADHS-Medikationsbedarf.
Die Verstärkung von PMS-Symptomen zum Ende der Lutealphase könnte eher auf die Serotonin erhöhende Wirkung von Östrogen zurückzuführen sein, die in dieser Phase wegfällt, was ein Absinken von Serotonin bewirkt.137
Östrogen moduliert Dopamin und Noradrenalin im PFC. 20 μg/kg 17β-Östradiol bewirkte bei Nagetieren:138139
- verbesserte Gedächtniskonsolidierung
- erhöhte dopaminerge, noradrenerge und serotonerge Neurotransmission im PFC
- erhöhte Konzentrationen von 5-HT, MHPG (Metabolit von NE)
- erhöhte DOPAC (Metabolit von DA)
- erhöhte Umsatzrate von NE zu MHPG kurz nach der Behandlung
Östrogen steuert den Dopaminspiegel durch eine Beeinflussung des Dopaminabbaus im PFC durch COMT.138 Siehe hierzu unter Östrogen verringert COMT und damit den Dopaminabbau durch COMT im PFC im Abschnitt Abschnitt Regulation von COMT im Beitrag Dopaminwiederaufnahme, Dopaminabbau
Östradiol fördert ebenfalls die Dopamin-Freisetzung.140141142
Progesteron verringert dagegen die dopaminerge Aktivität bei Frauen mit Suchtstörungen.142
Im Striatum moduliert Estradiol die Dopamin-Freisetzung schnell durch Bindung an membranständige Estradiolrezeptoren.143131
9.4.11. Melanin-konzentrierendes Hormon (MCH) hemmt Dopamin
Dieser Abschnitt basiert bislang maßgeblich auf Torterolo et al (2016).144
Das MCH- und das Dopaminsystem interagieren hinsichtlich der Kontrolle von Verhaltenszuständen.145
Das Neuropeptid Melanin-konzentrierendes Hormon (MCH) wird im Hypothalamus synthetisiert. MCH-erge Neuronen projizieren in das gesamte ZNS, einschließlich in die dopaminergen Bereichen Substantia nigra und VTA. Die MCH-Expression unterscheidet sich nach Geschlecht. Die MCH Expression hängt vom weiblichen Fortpflanzungszustand ab. MCH steuert Energiehomöostase und fördert Schlaf.
MCH-Neuronen feuern
- am stärksten im REM-Schlaf
- mittel während des Non-REM-Schlafs
- schwach im Wachzustand
MCH-erge Fasern und Rezeptoren finden sich im dopaminergen mesokortikolimbischen System, das ein Schlüsselzentrum für Aktivierung und Motivation ist.
MCH induziert Schlaf. MCH hemmt die Dopaminfreisetzung, was eine Upregulation von Dopaminrezeptoren bewirkt.
Es existieren 2 MCH-Rezeptoren:
- MCHR1
- wird gemeinsam mit Dopaminrezeptoren in der Nucleus accumbens shell exprimiert. Möglicherweise interagieren MCH und Dopamin in der Nucleus accumbens shell bei motivierten Reaktionen wie Nahrungs- oder Drogensuche.
- MCH allein veränderte in vitro das Spike-Firing in der Nucleus accumbens shell nicht
- MCH zusammen mit D1- oder D2-Agonisten erhöhte die Feuerrate
- MCH blockierte die durch Dopamin induzierte Phosphorylierung des AMPA-Glutamatrezeptors in der Nucleus accumbens shell.
- wird gemeinsam mit Dopaminrezeptoren in der Nucleus accumbens shell exprimiert. Möglicherweise interagieren MCH und Dopamin in der Nucleus accumbens shell bei motivierten Reaktionen wie Nahrungs- oder Drogensuche.
- MCHR2
MCH wirkt präsynaptisch wie postsynaptisch vornehmlich hemmend. Präsynaptisch verringert es die Freisetzung von GABA und Glutamat.
Umgekehrt beeinflusst Dopamin das MCH-System.
Dopamin hyperpolarisiert MCH-erge Neuronen über die Aktivierung von noradrenergen Alpha-2a-Rezeptoren
MCH-Neuronen erhalten mehr GABAerge Eingänge als glutamaterge. Dopamin beeinflusst diese Eingänge auf komplexe Weise.
Dopamin verringert die Erregbarkeit von MCHergen-Neuronen. D1- oder D2-Agonisten im Hypothalamus beeinflussten die MCH-Genexpression nicht.
Das von starkem Dopaminmangel gekennzeichnete Parkinson geht mit erhöhten MCH-Konzentrationen einher, die für die Beeinträchtigung des REM-Schlafs bei Parkinson verantwortlich sein dürften. Auch bei Depression wird ein MCH-Überschuss beobachtet. MCHR1-Antagonisten könnten zur Behandlung von Depression hilfreich sein.
Adipositas korreliert mit einem MCH-Überschuss. Eine Erhöhung von Dopamin (durch ADHS-Medikamente) geht dagegen häufig mit einem Appetitverlust einher. MCH und Dopamin scheinen beim Essverhalten und damit bei der Fettleibigkeit genauso eine komplementäre Rolle zu spielen, wie es auch für andere Verhaltensweisen erörtert wird.
9.4.12. Serotonin hemmt Dopamin
5-HT-Neuronen innervieren Dopamin-Neuronen sowohl in den Regionen der Dopaminsynthese (VTA und SNc) als auch in den dopaminergen Zielregionen (Nucleus accumbens, mPFC und Amygdala). Der Einfuss von Serotonin auf die dopaminerge Signalisierung ist abhängig von:146
- Subtyp des 5-HT-Rezeptors (z. B, 5-HT1a, 5-HT1b, 5-HT2, 5-HT3, 5-HT4, 5-HT5, 5-HT6, 5-HT7)
- dem DA-Ziel (VTA oder Substantie nigra)
- wechselseitigen afferenten/efferenten Verbindungen
5-HT-Agonisten/Agonisten, SSRI und 5-HT-Läsionen beeinflussen die Aktivität von Dopaminneuronen auf sehr komplexe und bislang nur unvollständig verstandene Art und Weise.147
Serotonin hemmt Dopamin.
- Eine Serotoningabe hemmt die Feuerung dopaminerge Neuronen148
- Eine elektrische Stimulation des dorsalen Raphe-Kerns151, vor allem durch 5-HT-1A-Agonisten, nur schwach durch 5-HT-1B-Agonisten152
- in Substantia nigra pars compacta
- Hemmung dopaminerge Neuronen mit niedrigen Feuerrate
- Erregung anderer Neuronen
- in VTA
- Hemmung dopaminerger Neuronen, die in Nucleus accumbens projizieren
- Erregung anderer VTA-DA-Neuronen
- in Substantia nigra pars compacta
- Stimulation von 5-HT-Terminals bewirkte (nur bei gleichzeitiger Glutamatfreisetzung147 und moduliert durch GABA.153
- in VTA kleinere exzitatorischen postsynaptische Potenziale
- in SNc größere exzitatorischen postsynaptische Potenziale
- 5-HT2C-Antagonisten erhöhen Dopamin im Nucleus accumbens
Dopamin trägt über den meslombischen Dopaminpfad zur Entstehung von Depression bei,156
9.4.13. CHR aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
CRH aktiviert dopaminerge Neuronen des VTA.120
CRH-Rezeptoren fanden sich in 70 % der dopaminergen VTA-Zellen. CRF-Rezeptor 2 war stärker exprimiert als CRF-Rezeptor 1.157
9.4.14. Substanz P
9.4.14.1. Substanz P aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
Substanz P aktiviert die meisten dopaminergen Neuronen des VTA.157
9.4.14.2. Substanz P reguliert Dopamin im Striatum
Diese Darstellung basiert auf Sulzer et al.72
Substanz P bindet an Neurokinin-1-Rezeptoren, die von DA-Neuronen exprimiert werden
Im Striatum wird Substanz P von D1R-exprimierenden Neuronen freigesetzt und in striatalen Kompartimenten, den sogenannten Striosomen, angereichert.
Substanz P moduliert die DA-Freisetzung in Abhängigkeit von der Lage der Striosomen-Matrix
- innerhalb der Striosomen wird die DA-Übertragung verstärkt
- an den Striosomen-Matrix-Grenzen wird die DA-Übertragung verringert
- in der umgebenden Matrix ist sie unverändert(Abbildung 4A)
Die Regulierung der DA-Freisetzung durch die Anreicherung anderer Modulatoren und Rezeptoren, einschließlich der mu-Opioidrezeptoren, zwischen Striosomen und Matrixkompartiment ist noch nicht bekannt, könnte aber einen sehr wichtigen Prozess bei der Regulierung der DA-Freisetzung und der Funktion der Basalganglien darstellen.
9.4.15. Neuropeptid Y aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
Neuropeptid Y aktiviert nur einen Teil der dopaminergen und GABAergen Neuronen des VTA.157
9.4.16. Orexin (Hypocretin) aktiviert dopaminerge Nervenzellen in VTA
Orexin (Hypocretin) erhöht in dopaminergen Neuronen des VTA sowie in benachbarten GABAergen Neuronen die mittlere Feuerrate und das Bursting.120
9.4.17. Neuropeptide ohne Aktivierung dopaminerger Nervenzellen in VTA
Das Alpha-Melanozyten-stimulierende Hormon hatte keine Auswirkungen auf dopaminerge Zellen der VTA und beeinflusste nur einen kleinen Teil der GABAergen Neuronen. Ghrelin, Agouti-verwandtes Peptid, Kokain, Amphetamin-verwandtes Transkript (CART) und Leptin modulierten die Feuerrate und das Membranpotenzial von VTA-Neuronen nicht.157
9.4.18. Cortisol hemmt Dopaminsynthese
Auf zahlreichen dopaminergen Zellen des Mittelhirns und des Hypothalamus befinden sich Glucocorticoidrezeptoren.158 Es wird angenommen, dass Cortisol die Dopaminfreisetzung in den Basalganglien und in nigrostriatalen und mesolimbischen Pfaden beeinflussen kann.159
Cortisol hemmt die Tyrosinhydroxylase, ein Enzym, das die Katecholaminsynthese limitiert, indem es als Katalysator für die Umwandlung von Tyrosin zu DOPA dient. Die Tyrosinhydroxylase wird durch Cortisol gehemmt (ebenso wie durch Dopamin und Noradrenalin selbst (negatives Feedback).160
Eine retrospektive Analyse fand eine Korrelation zwischen der Einnahme von Inhalations-Kortikosteroiden bei jüngeren Kindern mit mittelschwerem bis schwerem Asthma. Bei älteren Kindern fand sich diese Korrelation nicht.161
9.4.19. β-Arrestin hemmt Dopaminwirkung
DA-Rezeptoren können auch durch von G-Proteinen unabhängige Mechanismen aktiviert werden. Dies kann durch das multifunktionale Adaptorprotein Arrestin vermittelt werden, das von GPCR-Kinasen (GRKs) phosphorylierte DA-Rezeptoren bindet und mehrere Proteine rekrutiert, darunter Akt, GSK-3, MAPK, c-Src, Mdm2 und N-Ethylmaleimid-sensitiver Faktor. Die Bindung von Arrestin an aktive phosphorylierte Rezeptoren stoppt die weitere Aktivierung von G-Proteinen und fördert die Endozytose des Rezeptors. Bei Säugetieren gibt es sieben GRKs: GRK2, GRK3, GRK4, GRK5 und GRK6 regulieren D1R und D2R, während GRK4 den D3R kontrolliert. Im Striatum werden die GRKs 2, 3, 5 und 6 mit unterschiedlichen Expressionsniveaus und unterschiedlicher zellulärer und subzellulärer Verteilung exprimiert.162163
β-Arrestin:164
- bewirkt Desensibilisierung von Rezeptoren
- bewirkt Internalisierung von Rezeptoren
- dient als multifunktionaler Signalübermittler
- β-Arrestin dient als Adaptor/Gerüst, um die aktivierten Rezeptoren mit verschiedenen Signalwegen innerhalb der Zelle zu verbinden165
- β-Arrestin scheint (ebenso wie cAMP) dosisabhängig D1-Agonisten zu beeinflussen
9.4.20. VMAT2-Blockade unterbindet Dopaminübertragung
Die Dopaminübertragung wird durch Blockade oder Ausschalten des vesikulären Monoamintransporters Typ 2 (VMAT2) deaktiviert.166167
9.4.21. Botulinum A und B beeinträchtigen Dopaminübertragung
Die Botulinumtoxine A und B spalten SNAP-25 bzw. Synaptobrevin-2. Synaptobrevin-2 findet sich in den Dopamin-Varikositäten.168
9.4.25. GABA hemmt Dopamin
GABA, das an GABA-B-Rezeptoren bindet, hemmt die Ausschüttung von Dopamin im VTA. 16923 VTA-Dopamin adressiert den Nucleus accumbens.
9.4.26. FOXP2HUM beeinflusst Dopaminspiegel im Gehirn
Eins Substitution von zwei Aminosäuren (T303N, N325S) im Transkriptionsfaktor FOXP2 zeigte bei Mäusen zeigte verringerte Dopaminspiegel in:170
- Nucleus accumbens
- Frontaler Cortex
- Cerebellum
- Putamen caudatus
- Globus pallidus
- Glutamat, GABA, Serotonin unverändert
Bei heterozygoten FOXP2wt/ko-Mäusen, die einen intermediären FOVP2-Protein-Spiegel aufweisen und damit als Modell einer reduzierten FOXP2-Expression dienen, fanden sich dagegen erhöhte Dopaminspiegel.
Da FOXP2 nicht in dopaminergen Zellen exprimiert wird, handelt es sich um einen indirekten Effekt auf den Dopaminspiegel.
9.4.27. REV-ERB-Alpha
Rev-Erbα (nuclear receptor subfamily 1 group D member 1) ist ein zirkadianer nuklearer Rezeptor.171
Rev-Erbα hemmt die Transkriptions-Translations-Rückkopplungsschleife (TTFL) des Nucleus suprachiasmaticus, die auf Bmal1 mRNA abzielt.
Rev-Erbα beeinflusst die Dopamin-Produktion im Mittelhirn durch die Unterdrückung der Tyrosinhydroxylase mRNA-Produktion. Die Tyrosinhydroxylase-Spiegel waren nachts am höchsten, während die Rev-Erbα-Spiegel am niedrigsten waren. Dies deutet auf eine umgekehrte Beziehung hin.
Rev-Erbα-KO-Mäuse zeigen eine höhere DA-Freisetzung im Nucleus accumbens.
9.4.28. Oxytocin
Eine Aktivierung von Oxytocin-Neuronen im VTA erhöht die dopaminerge Aktivität im mesokortikolimbischen System. Mäuse zeigten nach Verabreichung eines Oxytocin-Rezeptor-Agonisten eine Abnahme der dopaminergen Freisetzung im Nucleus accumbens.172
9.4.29. RACK1
RACK1 ist ein kleines, vielseitiges Gerüstprotein, das mit vielen mit vielen Rezeptoren und Signalmolekülen interagiert. In Dopamin-Neuronen bindet RACK1 an DAT und reguliert die DAT-Phosphorylierung durch Protein kinase C.173
9.4.30. Nf-kB
Die Expression des striatalen Dopamin-D2-Rezeptors (DRD2) und der Adenosin-A2A-Rezeptors (A2AAR) wird durch den Nuklearfaktor KappaB (NF-KappaB, Nf-kB) reguliert. NF-kappaB p50-Untereinheit-KO-Mäuse (Nf-kB-p50 KO-Mäuse) zeigten im Striatum:174
- mehr A2AAR
- weniger A1AR
- weniger DRD2 mRNA
- verringerte [(3)H]-Methylspiperon-Bindung
- erhöhte G(alphaolf)- und G(alphas)-Proteine
- diese übertragen A2AAR-Signale
-reduziertes G(alphai1)-Protein
dieses leitet Signale von A1AR und DRD2 weiter
- diese übertragen A2AAR-Signale
Nf-kB p50-KO-Mäuse zeigten auf Koffein eine erhöhte Bewegungsaktivität.
9.4.31. Steroidhormone beinflussen Dopamin
Alle Substrate und Metaboliten des 5α-Reduktase-Stoffwechsels beeinflussen die Dopaminübertragung und -signalisierung auf vielfältige Weise:175
- Pregnenolon
- Progesteron
- 5α-DHP
- Allopregnanolon
9.4.31.1. DHEA fördert tonische und phasische Dopaminfreisetzung im Striatum
Dehydroepiandrosteron (DHEA) scheint die tonische und phasische Dopaminfreisetzung im Striatum zu erhöhen.62176
Die extrazelluläre Dopamin-Konzentration war bei DHEA-Gabe erhöht, während Dopamin-Metaboliten und das Dopamin/Metaboliten-Verhältnis verringert war. DHEA verringerte auch die motorische Aktivität, vor allem in den ersten 20 Minuten nach der Behandlung.
Eine frühere Studie desselben Hauptautors fand einen durch DHEA (um bis zu 33 %) reduzierten Dopamin-Umsatz im Striatum (nicht aber im Nucleus accumbens) und einen (um bis zu 76 %) erhöhten Serotonin-Umsatz in beiden Regionen.177 Die dort noch berichtete verringerte Dopamin-Freisetzung wurde in der neueren Studie nicht mehr aufrechterhalten.
9.4.31.2. Allopregnanolon
Antagonist: Isoallopregnanolon
Ähnliche Stoffe: Brexanolon, Ganaxolon, Zuranolon
Das Neurosteroid Allopregnanolon
- verringert die evozierte Dopaminfreisetzung in Abhängigkeit von Geschlecht und Östrusphase.178
- hemmt die basale und die stressinduzierte Dopaminausschüttung im PFC und im Nucleus accumbens.179
- erhöht die Dopaminfreisetzung und die dopaminerge Reaktion auf Morphin im Nucleus accumbens180
Akuter Stress erhöht, chronischer Stress verringert die Neurosteroidsynthese.175
5α-Reduktase ist an der Allopregnanolon-Synthese beteiligt.175
Mehr hierzu unter Allopregnanolon im Kapitel Neurologische Aspekte.
5α-Reduktase-Inhibitoren könnten damit im Ergebnis das Dopaminsystem beeinflussen, weisen jedoch erhebliche und langanhaltende Nebenwirkungen auf.
9.4.31.3. Pregnenolon
Pregnenolon
- moduliert die Dopaminfreisetzung im PFC von Nagetieren175
- heilt es dosisabhängig schizophrenieähnliche Verhaltensphänotypen in Dopamintransporter (DAT)-Knockout-Mäusen181
- Eine Pregnenolon-Gabe lindert signifikant hyperdopaminerge Verhaltensphänotypen, die durch Deletion von DAT im Gehirn verursacht werden:175
- psychomotorische Unruhe
- Stereotypie
- kognitiver Defizite
- bei der Präpulshemmung (PPI)
- beim Objekterkennungstest (ORT)182, Wong et al., 2012)
- verbessert die funktionelle Kapazität von Patienten mit Schizophrenie im Vergleich zu Placebo
- jedoch ohne signifikante Verbesserung der kognitiven Symptome183
- dämpft die durch Δ9-Tetrahydrocannabinol (THC) verursachten Phänomene von184182
- starkem Anstieg der extrazellulären Dopaminwerte in der NAK
- erhöhter Feuerungsaktivität der VTA-Neurone
- behebt psychoseähnliche Zustände bei Nagetieren durch eine endogene allosterische negative Modulation des CB1-Rezeptors185
9.4.32. Extrazelluläres Kalzium beeinflusst Dopaminfreisetzung in Striatum und Mittelhirn
Extrazelluläres Kalzium ist gleichermaßen erforderlich für die Dopaminfreisetzung aus:186
- Axon-Endigungen im Striatum
- Dendriten im Mittelhirn
9.4.33. Tyrosingabe / Tyrosindepletion beeinflusst DA-Synthese
Tyrosin ist ein Vorstoff von Dopamin.
Eine Gabe von Tyrosin kann Dopamin im Gehirn erhöhen, eine Depletion von Tyrosin kann Dopamin verringern. Mehr hierzu unter Tyrosin bei ADHS
9.4.34. KCNH3-Inhibitor erhöht Dopamin-Efflux
KCNH3 (BEC1) Ist ein spannungsgesteuerter Kaliumkanals der Unterfamilie H, Mitglied 3.187
ASP2905 (N-(4-Fluorphenyl)-N’-phenyl-N“-(pyrimidin-2-ylmethyl)-1,3,5-Triazin-2,4,6-triamin) ist ein potenter und selektiver Inhibitor ist ein KCNH3-Inhibitor.188
KCNH3 findet sich überwiegend im PFC.
Mäuse mit einer KCNH3-Überexpression zeigen kognitive Defizite, KCNH3-Knockout-Mäuse zeigen eine erhöhte kognitive Leistung (z.B. Aufmerksamkeit)
ASP2905 erhöhte den Efflux von Dopamin und Acetylcholin im mPFC bei Ratten.189
ASP2905 (0,0313 und 0,0625 mg/kg, po) verbesserte die latente Lernfähigkeit (als Abbild der Aufmerksmakeit) von Mäusen.
Bei jungen zu stroke-prone SHR wirkte ASP2905 so gut auf Unaufmerksamkeit und Impulsivität wie Methylphenidat.
ASP2905 erhöhte ebenso wie Amphetamin und Methylphenidat - signifikant die Alpha-Band-Leistung von Ratten, was auf eine Arousal-Erhöhung hindeutet, wie sie für die ADHS-Behandljung wichtig ist.
9.4.35. BDNF reguliert Dopamin im Striatum
Diese Darstellung basiert auf Sulzer et al.72
Der neurotrophe Faktor BDNF wirkt an TrkB- (und P75-) Rezeptoren.
Eine genetische Beseitigung (BDNF-/- -Mäuse) oder starke Verringerung von BDNF (BDNF-/+ -Mäuse) im Gehirn bewirkt190191
- evozierte Dopaminfreisetzung
- in der NAc-Shell deutlich verringerte
- im dorsalen Striatum deutlich verringerte
- im NAc-Kern unverändert
- dramatisch erhöhter Konsum fettreicher Nahrung (Aufnahme normaler Nahrung unverändert)
- normalisierter Konsum fettreicher Nahrung durch D1-Rezeptor-Agonisten
- extrazellulären Dopaminspiegel im Nucleus caudatus / Putamen mehr als verdoppelt
- verstärkten Anstieg des Dopaminspiegels nach Kaliumstimulation (120 mM) auf (10-fach) im Vergleich zu Wildtyp-Kontrollen (6-fach)
- elektrisch evozierte Dopamin-Freisetzung als auch die Dopamin-Aufnahmerate im Nucleus caudatus / Putamen reduziert
BDNF-Gabe
- verstärkt den durch Depolarisation evozierten DA-Überlauf im Striatum
- kann das elektrisch evozierte Dopamin in BDNF-/+-Mäusen teilweise wiederherstellen
- lässt extrazellulären Dopaminspiegel unverändert
9.4.36. GDNF reguliert Dopamin-Freisetzung und Dopamin-Aufnahme im Striatum
Diese Darstellung basiert auf Sulzer et al.72
Der neurotrophe Faktor GDNF kann die striatale DA-Freisetzung und -Aufnahme regulieren. GDNF spielt eine Schlüsselrolle bei der Entwicklung, Aufrechterhaltung und Regeneration des mesostriatalen DA-Systems.192
Eine GDNF-Injektion in den NAc bewirkte in vivo einen Anstieg der K+-ausgelösten DA-Freisetzung im Nucleus caudatus / Putamen193 über einen lang anhaltenden Anstieg der TH-Phosphorylierung und vermutlich der DA-Synthese im Striatum und SNc.194
GDNF erhöht die Menge der Ausschüttung von DA aus Vesikeln in axonalen Varizen von DA-Neuronen des Mittelhirns.195
GDNF erhöht die Anzahl der DA-Neuronen im Mittelhirn und der Terminals im Striatum und erhöht dadurch Dopamin im Striatum.196
GDNF reguliert über seinen Rezeptor (Ret) die DAT-Oberflächenexpression mittels des Guanin-Nukleotid-Austauschfaktor-Proteins VAV2 (aus der Rho-Familie). Mäuse ohne Vav2 oder Ret zeigen eine erhöhte DAT-Aktivität im NAc.196
9.4.37. Insulin reguliert Dopamin in Striatum, VTA, Substantia nigra
Diese Darstellung basiert auf Sulzer et al.72
Insulin im Gehirn stammt hauptsächlich peripher aus β-Zellen der Bauchspeicheldrüse.
Insulinrezeptoren sind im Gehirn weit exprimiert. Sie finden sich
- im Striatum
- besonders häufig im NAc
- auf DA-Neuronen in VTA und Substantia nigra pars compacta
- auf cholinergen Interneuronen
Insulin reguliert Dopamin:197
- im Striatum
- erhöhte DAT-Dopamin-(Wieder)aufnahme
- via PI3-Kinase
- erhöhte DA-Freisetzung
- durch Insulinrezeptoren auf cholinergen Interneuronen198
- erfordert Aktivierung von nikotinischen Acetylcholin-Rezeptoren (nAChR)
- nAChR-Antagonisten blockieren Insulinwirkung
- Cholin-Acetyltransferase-Knockout-Mäuse zeigen keine Wirkung von Insulin auf Dopamin
- stärker als DAT-Wiederaufnahmeerhöhung
- in der Summe damit erhöhtes extrazelluläres (?) Dopamin198
- erhöhte DAT-Dopamin-(Wieder)aufnahme
- im VTA199
- in der Substantia nigra202
- erhöhte Feuerrate bei der Hälfte der dopaminergen SNc-Neuronen
- nicht bei Mäusen, denen Insulinrezeptoren in Tyrosinhydroxylase (TH) exprimierenden Neuronen
Insulin scheint neben dem Sättigungssignal auch ein (dopaminerges) Belohnungssignal auslösen zu können198
- Verhaltenstests zu Geschmackspräferenz bei verhaltensauffälligen Tieren zeigen, dass Insulin in der NAc-Schale die Nahrungspräferenz beeinflusst
- Insulin könnte am nahrungsbezogenen Lernen beteiligt sein
9.5. Nahrung, Medikamente, Gifte
9.5.1. Alkoholkonsum erhöht Dopamin
Der Konsum von Alkohol erhöht Dopamin.169
9.5.2. Kohlenhydrate erhöhen Dopamin
Kohlenhydratekonsum (Fast food) erhöht Dopamin.169
9.5.3. Nahrungsmangel beeinflusst Dopamin
Veränderungen in der chronischen Nahrungsverfügbarkeit fördern die Desensibilisierung der D2-Rezeptoren im Mittelhirn.203
Eine chronische leichte Nahrungsbeschränkung erhöht das dopaminerge Burst-Feuern in der Substantia nigra. Das verstärkte Burst-Feuern hielt auch nach 10 Tagen freier Fütterung im Anschluss an eine chronische Nahrungsrestriktion an.
Ein einzelner Fasten-Tag beeinflusste das Burst-Feuern nicht.
9.5.4. Medikamente
9.5.4.1. Stimulanzien
9.5.4.1.1. Methylphenidat
Methylphenidat erhöht extrazelluläres Dopamin; phasisches nur in Abhängigkeit von D2-Rezeptoren
Methylphenidat scheint tonisches Dopamin anzuheben. Phasisches Dopamin wird durch MPH nicht verändert, offenbar, weil der D2-Rezeptor-Feedbackmechanismus dies hemmt. Wird parallel zu MPH ein D2-Antagonist gegeben, erhöht MPH auch phasisches Dopamin.204 Dies wirft unserer Ansicht nach die Frage auf, wie sehr die Menge und Bindungsempfindlichkeit der verfügbaren D2-Rezeptoren bei Betroffenen zu einer individuell unterschiedlichen Wirkung von MPH führt.
9.5.4.1.2. Amphetamin erhöht phasisches Dopamin
Amphetamin erhöht Dopamin auf verschiedenen Wegen:205
9.5.4.1.2.1. Amphetamin erhöht phasisches DA durch Wiederaufnahmehemmung
AMP hemmt die Dopamin-Wiederaufnahme206207208 was die tonische Dopaminfreisetzung erhöhe.206
9.5.4.1.2.2. Amphetamin erhöht (kurz)phasisches Dopamin durch erhöhte Ausschüttung
- AMP fördert das phasische Burst-Firing von Dopamin-Neuronen
- AMP bewirkte eine Upregulation der Dopamin-Freisetzung aus den Vesikeln 211
- AMP bewirkte dosisabhängig eine erhöhte Dopaminausschüttung auf phasische elektrische Impulse206
- AMP erhöhte die Amplitude, Dauer und Häufigkeit von spontanen Dopamin-Transienten (die natürlich auftretenden, nicht elektrisch evozierten, phasischen Anstiege des extrazellulären Dopamins).206
- Niedrig dosiertes AMP erhöhte die Dopamintransienten, die durch erwartete Belohnung hervorgerufen wurden206
-
AMP kehrt Richtung des Dopamintransporters um (Dopamin-Efflux)212213205
- bewirkt nicht-exozytotische Freisetzung, unabhängig vom Aktionspotential
- begrenzt durch vesikuläre Erschöpfung
Amphetamin scheint in medikamentös relevanten Dosen vornehmlich phasisches Dopamin zu erhöhen. Bei Dosen weit oberhalb medikamentös relevanter Dosierungen scheint AMP eine paradoxe Erhöhung von tonischem und phasischem Dopamin zu bewirken:211
An anästhetisierten Ratten bewirkte205
- im dorsalen Striatum
- 1 mg/kg Amphetamin (dies entspricht einer sehr hohen medikamentösen Dosis)
- eine leichte Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 15 %
- eine deutliche Verringerung des langphasischen Dopamins um ca. 40 %
- eine sehr starke Verringerung des tonischen Dopamins um ca. 65 %
- 10 mg/kg Amphetamin im dorsalen Striatum (dies entspricht einer Drogen-Dosierung)
- eine extreme Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 300 %
- eine Verringerung des langphasischen Dopamins um ca. 20 %
- eine sehr starke Verringerung des tonischen Dopamins um ca. 75 %
- 40 mg/kg Cocain im dorsalen Striatum (dies entspricht einer Drogen-Dosierung)
- eine extreme Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 300 %
- keine Veränderung des langphasischen Dopamins
- keine Veränderung des tonischen Dopamins
- 1 mg/kg Amphetamin (dies entspricht einer sehr hohen medikamentösen Dosis)
- im ventralen Striatum
- 1 mg/kg Amphetamin (dies entspricht einer sehr hohen medikamentösen Dosis)
- eine deutliche Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 50 %
- eine leichte Erhöhung des mittelphasischen Dopamins
- eine leichte Verringerung des langphasischen Dopamins
- 10 mg/kg Amphetamin im dorsalen Striatum (dies entspricht einer Drogen-Dosierung)
- eine extreme Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 370 %
- eine Erhöhung des mittelphasischen Dopamins um ca. 40 %
- keine Veränderung des langphasischen Dopamins
- 40 mg/kg Cocain im dorsalen Striatum (dies entspricht einer Drogen-Dosierung)
- eine starke Erhöhung des kurzphasischen Dopamins um ca. 170 %
- eine leichte Erhöhung des mittelphasischen Dopamins
- eine leichte Verringerung des langphasischen Dopamins
- 1 mg/kg Amphetamin (dies entspricht einer sehr hohen medikamentösen Dosis)
Kurzphasisches Dopamin meint das Dopamin, das auf eine elektrische Stimulation von 0,4 Sekunden ausgeschüttet wurde, das den sofort ausschüttbaren Vesikelpool (Readily Releasable Pool) adressiert.
Mittelphasisches Dopamin meint das Dopamin, das auf eine elektrische Stimulation von 2 Sekunden ausgeschüttet wurde.
Langphasisches Dopamin meint das Dopamin, das auf eine elektrische Stimulation von 10 Sekunden ausgeschüttet wurde, das aus dem Reserve-Vesikel-Pool gespeist wird.
Tonisches Dopamin wird durch Amphetamin dagegen durch eine Umkehr der Dopamintransporter (Dopamin-Efflux) erhöht.205
Die Autoren interpretieren die Ergebnisse dahin gehend, dass Amphetamin unterschiedliche Wirkungen auf verschiedene Vesikelpools habe, die das phasische Dopamin in der Präsynapse vorhalten.
Offen ist, inwieweit Amphetamin auch bei normaler bis niedriger Dosierung innerhalb des medikamentenüblichen Rahmens phasisches Dopamin erhöht.
Vesikel werden typisiert in:214
- Readily Releasable Pool
- primär in der präsynaptischen Zone positioniert
- meist unmittelbar ausschüttungsbereit
- Recycling Pool
- wird durch moderate Stimulationen adressiert
- wird kontinuierlich wieder aufgefüllt
- Reserve Pool
- wird nur durch außergewöhnlich intensive Stimulation adressiert
- bei normalen physiologischen Reaktion nicht involviert
9.5.4.1.3. AMP setzt Dopamin in PFC via NET frei
Amphetamin setzt im PFC extrazelluläres Dopamin primär via NET frei, während Methamphetamin die NET kaum anzusprechen scheint.215
Ramamoorthy S, Shippenberg TS, Jayanthi LD (2011): Regulation of monoamine transporters: Role of transporter phosphorylation. Pharmacol Ther. 2011 Feb;129(2):220-38. doi: 10.1016/j.pharmthera.2010.09.009. PMID: 20951731; PMCID: PMC3031138. REVIEW ↥
Schmitt KC, Reith ME (2010): Regulation of the dopamine transporter: aspects relevant to psychostimulant drugs of abuse. Ann N Y Acad Sci. 2010 Feb;1187:316-40. doi: 10.1111/j.1749-6632.2009.05148.x. PMID: 20201860. REVIEW ↥
Vaughan RA, Foster JD (2013): Mechanisms of dopamine transporter regulation in normal and disease states. Trends Pharmacol Sci. 2013 Sep;34(9):489-96. doi: 10.1016/j.tips.2013.07.005. PMID: 23968642; PMCID: PMC3831354. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Garcia-Olivares J, Torres-Salazar D, Owens WA, Baust T, Siderovski DP, Amara SG, Zhu J, Daws LC, Torres GE (2013): Inhibition of dopamine transporter activity by G protein βγ subunits. PLoS One. 2013;8(3):e59788. doi: 10.1371/journal.pone.0059788. PMID: 23555781; PMCID: PMC3608556. ↥ ↥
Mulvihill (2019): Presynaptic regulation of dopamine release: Role of the DAT and VMAT2 transporters. Neurochem Int. 2019 Jan;122:94-105. doi: 10.1016/j.neuint.2018.11.004. PMID: 30465801. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥
Patel AP, Cerruti C, Vaughan RA, Kuhar MJ (1994): Developmentally regulated glycosylation of dopamine transporter. Brain Res Dev Brain Res. 1994 Nov 18;83(1):53-8. doi: 10.1016/0165-3806(94)90178-3. PMID: 7697870. ↥
Krause, Krause (2014): ADHS im Erwachsenenalter, Schattauer, Seite 232, mit etlichen Nachweisen ↥
Dougherty, Bonab, Spencer, Rauch, Madras, Fischman (1999): Dopamine transporter density in patients with attention deficit hyperactivity disorder. Lancet 354: 2132-2133; Article (PDF Available) in The Lancet 354(9196):2132-3 · December 1999 with 294 Reads (Stand 10/2016); DOI: 10.1016/S0140-6736(99)04030-1 · Source: PubMe ↥
Cruz-Muros I, Afonso-Oramas D, Abreu P, Pérez-Delgado MM, Rodríguez M, González-Hernández T (2009): Aging effects on the dopamine transporter expression and compensatory mechanisms. Neurobiol Aging. 2009 Jun;30(6):973-86. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2007.09.009. PMID: 17976862. ↥
Speranza L, di Porzio U, Viggiano D, de Donato A, Volpicelli F (2021): Dopamine: The Neuromodulator of Long-Term Synaptic Plasticity, Reward and Movement Control. Cells. 2021 Mar 26;10(4):735. doi: 10.3390/cells10040735. PMID: 33810328; PMCID: PMC8066851. REVIEW ↥
Gordon, Weizman, Rehavi (1996): Modulatory effect of agents active in the presynaptic dopaminergic system on the striatal dopamine transporter. Eur J Pharmacol. 1996 Feb 29;298(1):27-30. doi: 10.1016/0014-2999(95)00770-9. PMID: 8867915. ↥
Han, Rowell, Carr (1999): D2 autoreceptors are not involved in the down-regulation of the striatal dopamine transporter caused by alpha-methyl-p-tyrosine. Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 1999;104(3):331-8. PMID: 10741383.) ↥
Afonso-Oramas, Cruz-Muros, Barroso-Chinea, Álvarez de la Rosa, Castro-Hernández, Salas-Hernández, Giráldez, González-Hernández (2010): The dopamine transporter is differentially regulated after dopaminergic lesion. Neurobiol Dis. 2010 Dec;40(3):518-30. doi: 10.1016/j.nbd.2010.07.012. PMID: 20688165. ↥
[Han, Rowell, Carr (1999): D2 autoreceptors are not involved in the down-regulation of the striatal dopamine transporter caused by alpha-methyl-p-tyrosine. Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 1999;104(3):331-8. PMID: 10741383.)](https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10741383/ ↥
Fusar-Poli, Rubia, Rossi, Sartori, Balottin (2012): Striatal dopamine transporter alterations in ADHD: pathophysiology or adaptation to psychostimulants? A meta-analysis. Am J Psychiatry. 2012 Mar;169(3):264-72. doi: 10.1176/appi.ajp.2011.11060940. PMID: 22294258. METASTUDIE ↥
Spencer, Madras, Fischman, Krause, La Fougère (2012): Striatal dopamine transporter binding in adults with ADHD. Am J Psychiatry. 2012 Jun;169(6):665; author reply 666. doi: 10.1176/appi.ajp.2012.12020232. PMID: 22684601. sowie die Antwort von Fusar-Poli hierauf ↥
Reith, Kortagere, Wiers, Sun, Kurian, Galli, Volkow, Lin (2021): The dopamine transporter gene SLC6A3: multidisease risks. Mol Psychiatry. 2021 Oct 14. doi: 10.1038/s41380-021-01341-5. PMID: 34650206. ↥
Franck (2003): Hyperaktivität und Schizophrenie – eine explorative Studie; Dissertation, unter Verweis auf Dougherty et al. 1999 ↥
Solanto (2002): Dopamine dysfunction in AD/HD: integrating clinical and basic neuroscience research. Behav Brain Res. 2002 Mar 10;130(1-2):65-71. ↥
Kimmel HL, Joyce AR, Carroll FI, Kuhar MJ (2001): Dopamine D1 and D2 receptors influence dopamine transporter synthesis and degradation in the rat. J Pharmacol Exp Ther. 2001 Jul;298(1):129-40. PMID: 11408534. ↥
Schmitz Y, Schmauss C, Sulzer D. Altered dopamine release and uptake kinetics in mice lacking D2 receptors. J Neurosci. 2002 Sep 15;22(18):8002-9. doi: 10.1523/JNEUROSCI.22-18-08002.2002. PMID: 12223553; PMCID: PMC6758092. ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Xie, Miller (2008): Beta-phenylethylamine alters monoamine transporter function via trace amine-associated receptor 1: implication for modulatory roles of trace amines in brain. J Pharmacol Exp Ther. 2008 May;325(2):617-28. doi: 10.1124/jpet.107.134247. PMID: 18182557. ↥
Xie, Westmoreland, Miller (2008): Modulation of monoamine transporters by common biogenic amines via trace amine-associated receptor 1 and monoamine autoreceptors in human embryonic kidney 293 cells and brain synaptosomes. J Pharmacol Exp Ther. 2008 May;325(2):629-40. doi: 10.1124/jpet.107.135079. PMID: 18310473. ↥
Leo, Mus, Espinoza, Hoener, Sotnikova, Gainetdinov (2014): Taar1-mediated modulation of presynaptic dopaminergic neurotransmission: role of D2 dopamine autoreceptors. Neuropharmacology. 2014 Jun;81:283-91. doi: 10.1016/j.neuropharm.2014.02.007. PMID: 24565640. ↥
Wheeler, Edwards, Chapman, Ondo (1993): A model of the sodium dependence of dopamine uptake in rat striatal synaptosomes. Neurochem Res. 1993 Aug;18(8):927-36. doi: 10.1007/BF00998279. PMID: 8371835. ↥
Roitman, Patterson, Sakai, Bernstein, Figlewicz (1999): Sodium depletion and aldosterone decrease dopamine transporter activity in nucleus accumbens but not striatum. Am J Physiol. 1999 May;276(5):R1339-45. doi: 10.1152/ajpregu.1999.276.5.R1339. PMID: 10233025. ↥
Cvetkovic-Lopes, Eggermann, Uschakov, Grivel, Bayer, Jones, Serafin, Mühlethaler (2010): Rat hypocretin/orexin neurons are maintained in a depolarized state by TRPC channels. PLoS One. 2010 Dec 16;5(12):e15673. doi: 10.1371/journal.pone.0015673. PMID: 21179559; PMCID: PMC3002943. ↥
Khoshbouei H, Sen N, Guptaroy B, Johnson L’, Lund D, Gnegy ME, Galli A, Javitch JA (2004): N-terminal phosphorylation of the dopamine transporter is required for amphetamine-induced efflux. PLoS Biol. 2004 Mar;2(3):E78. doi: 10.1371/journal.pbio.0020078. PMID: 15024426; PMCID: PMC368172. ↥
Melikian HE, Buckley KM (1999): Membrane trafficking regulates the activity of the human dopamine transporter. J Neurosci. 1999 Sep 15;19(18):7699-710. doi: 10.1523/JNEUROSCI.19-18-07699.1999. PMID: 10479674; PMCID: PMC6782463. ↥ ↥ ↥
[Miranda, Dionne, Sorkina, Sorkin (2007): Three ubiquitin conjugation sites in the amino terminus of the dopamine transporter mediate protein kinase C-dependent endocytosis of the transporter. Mol Biol Cell. 2007 Jan;18(1):313-23. doi: 10.1091/mbc.e06-08-0704. PMID: 17079728; PMCID: PMC1751334.](https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1751334/ ↥
Hong, Amara (2013): Differential targeting of the dopamine transporter to recycling or degradative pathways during amphetamine- or PKC-regulated endocytosis in dopamine neurons. FASEB J. 2013 Aug;27(8):2995-3007. doi: 10.1096/fj.12-218727. PMID: 23612789; PMCID: PMC3714572. ↥
Loder MK, Melikian HE (2003): The dopamine transporter constitutively internalizes and recycles in a protein kinase C-regulated manner in stably transfected PC12 cell lines. J Biol Chem. 2003 Jun 13;278(24):22168-74. doi: 10.1074/jbc.M301845200. PMID: 12682063; PMCID: PMC2597781. ↥
Cowell RM, Kantor L, Hewlett GH, Frey KA, Gnegy ME (2000): Dopamine transporter antagonists block phorbol ester-induced dopamine release and dopamine transporter phosphorylation in striatal synaptosomes. Eur J Pharmacol. 2000 Feb 11;389(1):59-65. doi: 10.1016/s0014-2999(99)00828-6. PMID: 10686296. ↥
Opazo F, Schulz JB, Falkenburger BH (2010): PKC links Gq-coupled receptors to DAT-mediated dopamine release. J Neurochem. 2010 Jul;114(2):587-96. doi: 10.1111/j.1471-4159.2010.06788.x. PMID: 20477913. ↥
Cremona ML, Matthies HJ, Pau K, Bowton E, Speed N, Lute BJ, Anderson M, Sen N, Robertson SD, Vaughan RA, Rothman JE, Galli A, Javitch JA, Yamamoto A (2011): Flotillin-1 is essential for PKC-triggered endocytosis and membrane microdomain localization of DAT. Nat Neurosci. 2011 Apr;14(4):469-77. doi: 10.1038/nn.2781. Erratum in: Nat Neurosci. 2011 Dec;14(2):1617. PMID: 21399631; PMCID: PMC3066276. ↥ ↥
Vina-Vilaseca A, Sorkin A (2010): Lysine 63-linked polyubiquitination of the dopamine transporter requires WW3 and WW4 domains of Nedd4-2 and UBE2D ubiquitin-conjugating enzymes. J Biol Chem. 2010 Mar 5;285(10):7645-56. doi: 10.1074/jbc.M109.058990. PMID: 20051513; PMCID: PMC2844211. ↥ ↥
Sorkina T, Caltagarone J, Sorkin A (2013): Flotillins regulate membrane mobility of the dopamine transporter but are not required for its protein kinase C dependent endocytosis. Traffic. 2013 Jun;14(6):709-24. doi: 10.1111/tra.12059. PMID: 23418867; PMCID: PMC3947585. ↥ ↥
Daniels GM, Amara SG (1999): Regulated trafficking of the human dopamine transporter. Clathrin-mediated internalization and lysosomal degradation in response to phorbol esters. J Biol Chem. 1999 Dec 10;274(50):35794-801. doi: 10.1074/jbc.274.50.35794. PMID: 10585462. ↥
Sorkina T, Hoover BR, Zahniser NR, Sorkin A (2005): Constitutive and protein kinase C-induced internalization of the dopamine transporter is mediated by a clathrin-dependent mechanism. Traffic. 2005 Feb;6(2):157-70. doi: 10.1111/j.1600-0854.2005.00259.x. PMID: 15634215. ↥
Yeon, J. A., Kim, S. J. (2010): Neuroprotective effect of taurine against oxidative stress-induced damages in neuronal cells. Biomolecules and Therapeutics, 18(1), 24-31. ↥
Chen, Chiu, Chen, Hsu, Tzang (2018): Effects of taurine on striatal dopamine transporter expression and dopamine uptake in SHR rats; Behav Brain Res. 2018 Apr 22. pii: S0166-4328(18)30306-1. doi: 10.1016/j.bbr.2018.04.031. ↥
Mayer FP, Stewart A, Varman DR, Moritz AE, Foster JD, Owens AW, Areal LB, Gowrishankar R, Velez M, Wickham K, Phelps H, Katamish R, Rabil M, Jayanthi LD, Vaughan RA, Daws LC, Blakely RD, Ramamoorthy S (2023): Kappa Opioid Receptor Antagonism Rescues Genetic Perturbation of Dopamine Homeostasis: Molecular, Physiological and Behavioral Consequences. bioRxiv [Preprint]. 2023 May 3:2023.05.03.539310. doi: 10.1101/2023.05.03.539310. PMID: 37205452; PMCID: PMC10187322. ↥
Moszczynska A, Saleh J, Zhang H, Vukusic B, Lee FJ, Liu F (2007): Parkin disrupts the alpha-synuclein/dopamine transporter interaction: consequences toward dopamine-induced toxicity. J Mol Neurosci. 2007;32(3):217-27. doi: 10.1007/s12031-007-0037-0. PMID: 17873367. ↥ ↥ ↥ ↥
Rastedt, Vaughan, Foster (2017): Palmitoylation mechanisms in dopamine transporter regulation. J Chem Neuroanat. 2017 Oct;83-84:3-9. doi: 10.1016/j.jchemneu.2017.01.002. PMID: 28115272; PMCID: PMC6077000. REVIEW ↥
Foster JD, Vaughan RA (2011): Palmitoylation controls dopamine transporter kinetics, degradation, and protein kinase C-dependent regulation. J Biol Chem. 2011 Feb 18;286(7):5175-86. doi: 10.1074/jbc.M110.187872. PMID: 21118819; PMCID: PMC3037630. ↥
Fog JU, Khoshbouei H, Holy M, Owens WA, Vaegter CB, Sen N, Nikandrova Y, Bowton E, McMahon DG, Colbran RJ, Daws LC, Sitte HH, Javitch JA, Galli A, Gether U (2006): Calmodulin kinase II interacts with the dopamine transporter C terminus to regulate amphetamine-induced reverse transport. Neuron. 2006 Aug 17;51(4):417-29. doi: 10.1016/j.neuron.2006.06.028. PMID: 16908408. ↥ ↥
Lee FJ, Liu F, Pristupa ZB, Niznik HB (2001): Direct binding and functional coupling of alpha-synuclein to the dopamine transporters accelerate dopamine-induced apoptosis. FASEB J. 2001 Apr;15(6):916-26. doi: 10.1096/fj.00-0334com. PMID: 11292651. ↥
Lam HA, Wu N, Cely I, Kelly RL, Hean S, Richter F, Magen I, Cepeda C, Ackerson LC, Walwyn W, Masliah E, Chesselet MF, Levine MS, Maidment NT (2011): Elevated tonic extracellular dopamine concentration and altered dopamine modulation of synaptic activity precede dopamine loss in the striatum of mice overexpressing human α-synuclein. J Neurosci Res. 2011 Jul;89(7):1091-102. doi: 10.1002/jnr.22611. PMID: 21488084; PMCID: PMC4755488. ↥
Lee FJ, Pei L, Moszczynska, Vukusic, Fletcher, Liu F (2007): Dopamine transporter cell surface localization facilitated by a direct interaction with the dopamine D2 receptor. EMBO J. 2007 Apr 18;26(8):2127-36. doi: 10.1038/sj.emboj.7601656. PMID: 17380124; PMCID: PMC1852782. ↥ ↥ ↥
Egaña LA, Cuevas RA, Baust TB, Parra LA, Leak RK, Hochendoner S, Peña K, Quiroz M, Hong WC, Dorostkar MM, Janz R, Sitte HH, Torres GE (2009): Physical and functional interaction between the dopamine transporter and the synaptic vesicle protein synaptogyrin-3. J Neurosci. 2009 Apr 8;29(14):4592-604. doi: 10.1523/JNEUROSCI.4559-08.2009. PMID: 19357284; PMCID: PMC2846176. ↥ ↥
Pike LJ (2006): Rafts defined: a report on the Keystone Symposium on Lipid Rafts and Cell Function. J Lipid Res. 2006 Jul;47(7):1597-8. doi: 10.1194/jlr.E600002-JLR200. PMID: 16645198. ↥
Jones KT, Zhen J, Reith ME (2012): Importance of cholesterol in dopamine transporter function. J Neurochem. 2012 Dec;123(5):700-15. doi: 10.1111/jnc.12007. PMID: 22957537; PMCID: PMC3517300. ↥ ↥ ↥
Adkins EM, Samuvel DJ, Fog JU, Eriksen J, Jayanthi LD, Vaegter CB, Ramamoorthy S, Gether U (2007): Membrane mobility and microdomain association of the dopamine transporter studied with fluorescence correlation spectroscopy and fluorescence recovery after photobleaching. Biochemistry. 2007 Sep 18;46(37):10484-97. doi: 10.1021/bi700429z. PMID: 17711354. ↥
Wray, Rasenick (2019): Chapter Two - Lipid rafts in psychiatry, Advances in Pharmacology, Volume 86, 2019, Pages 21-45 ↥
Pandolfo, Silveirinha, dos Santos-Rodrigues, Venance, Ledent, Takahashi, Cunha, Köfalvi (2011): Cannabinoids inhibit the synaptic uptake of adenosine and dopamine in the rat and mouse striatum. Eur J Pharmacol. 2011 Mar 25;655(1-3):38-45. doi: 10.1016/j.ejphar.2011.01.013. PMID: 21266173. ↥
Li LB, Chen N, Ramamoorthy S, Chi L, Cui XN, Wang LC, Reith ME (2004): The role of N-glycosylation in function and surface trafficking of the human dopamine transporter. J Biol Chem. 2004 May 14;279(20):21012-20. doi: 10.1074/jbc.M311972200. PMID: 15024013. ↥
Afonso-Oramas D, Cruz-Muros I, Alvarez de la Rosa D, Abreu P, Giráldez T, Castro-Hernández J, Salas-Hernández J, Lanciego JL, Rodríguez M, González-Hernández T (2009): Dopamine transporter glycosylation correlates with the vulnerability of midbrain dopaminergic cells in Parkinson’s disease. Neurobiol Dis. 2009 Dec;36(3):494-508. doi: 10.1016/j.nbd.2009.09.002. PMID: 19766189. ↥
Kianičková K, Pažitná L, Kundalia PH, Pakanová Z, Nemčovič M, Baráth P, Katrlíková E, Šuba J, Trebatická J, Katrlík J (2023): Alterations in the Glycan Composition of Serum Glycoproteins in Attention-Deficit Hyperactivity Disorder. Int J Mol Sci. 2023 May 14;24(10):8745. doi: 10.3390/ijms24108745. PMID: 37240090; PMCID: PMC10218324. n = 20 ↥
Tomas-Camardiel M, Sanchez-Hidalgo MC, Sanchez del Pino MJ, Navarro A, Machado A, Cano J (2002): Comparative study of the neuroprotective effect of dehydroepiandrosterone and 17beta-estradiol against 1-methyl-4-phenylpyridium toxicity on rat striatum. Neuroscience. 2002;109(3):569-84. doi: 10.1016/s0306-4522(01)00502-4. PMID: 11823067. ↥
Pérez-Neri I, Parra D, Aquino-Miranda G, Coffeen U, Ríos C (2020): Dehydroepiandrosterone increases tonic and phasic dopamine release in the striatum. Neurosci Lett. 2020 Aug 24;734:135095. doi: 10.1016/j.neulet.2020.135095. PMID: 32473195. ↥ ↥
Zhu J, Apparsundaram, Bardo, Dwoskin (2005): Environmental enrichment decreases cell surface expression of the dopamine transporter in rat medial prefrontal cortex. J Neurochem. 2005 Jun;93(6):1434-43. doi: 10.1111/j.1471-4159.2005.03130.x. PMID: 15935059. ↥
Harraz MM (2023): Selective dopaminergic vulnerability in Parkinson’s disease: new insights into the role of DAT. Front Neurosci. 2023 Aug 24;17:1219441. doi: 10.3389/fnins.2023.1219441. PMID: 37694119; PMCID: PMC10483232. REVIEW ↥
Martinat C, Bacci JJ, Leete T, Kim J, Vanti WB, Newman AH, Cha JH, Gether U, Wang H, Abeliovich A. Cooperative transcription activation by Nurr1 and Pitx3 induces embryonic stem cell maturation to the midbrain dopamine neuron phenotype. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Feb 21;103(8):2874-9. doi: 10.1073/pnas.0511153103. Epub 2006 Feb 13. PMID: 16477036; PMCID: PMC1413837. ↥
Wu T, Cai W, Chen X (2023): Epigenetic regulation of neurotransmitter signaling in neurological disorders. Neurobiol Dis. 2023 Aug;184:106232. doi: 10.1016/j.nbd.2023.106232. PMID: 37479091. REVIEW ↥
Choi JK, Kim YJ (2008): Epigenetic regulation and the variability of gene expression. Nat Genet. 2008 Feb;40(2):141-7. doi: 10.1038/ng.2007.58. PMID: 18227874. ↥
Devoto, Sagheddu, Santoni, Flore, Saba, Pistis, Gessa (2020): Noradrenergic Source of Dopamine Assessed by Microdialysis in the Medial Prefrontal Cortex. Front Pharmacol. 2020 Sep 23;11:588160. doi: 10.3389/fphar.2020.588160. PMID: 33071798; PMCID: PMC7538903. ↥ ↥ ↥ ↥
Ford CP (2014): The role of D2-autoreceptors in regulating dopamine neuron activity and transmission. Neuroscience. 2014 Dec 12;282:13-22. doi: 10.1016/j.neuroscience.2014.01.025. PMID: 24463000; PMCID: PMC4108583. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Sulzer D, Galli A (2003): Dopamine transport currents are promoted from curiosity to physiology. Trends Neurosci. 2003 Apr;26(4):173-6. doi: 10.1016/S0166-2236(03)00063-8. PMID: 12689764. ↥
Takeuchi Y, Fukunaga K, Miyamoto E (2002): Activation of nuclear Ca(2+)/calmodulin-dependent protein kinase II and brain-derived neurotrophic factor gene expression by stimulation of dopamine D2 receptor in transfected NG108-15 cells. J Neurochem. 2002 Jul;82(2):316-28. doi: 10.1046/j.1471-4159.2002.00967.x. PMID: 12124432. ↥
Sulzer D, Cragg SJ, Rice ME (2016): Striatal dopamine neurotransmission: regulation of release and uptake. Basal Ganglia. 2016 Aug;6(3):123-148. doi: 10.1016/j.baga.2016.02.001. PMID: 27141430; PMCID: PMC4850498. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Benoit-Marand M, Ballion B, Borrelli E, Boraud T, Gonon F (2011): Inhibition of dopamine uptake by D2 antagonists: an in vivo study. J Neurochem. 2011 Feb;116(3):449-58. doi: 10.1111/j.1471-4159.2010.07125.x. PMID: 21128941. ↥
Lammel S, Hetzel A, Häckel O, Jones I, Liss B, Roeper J (2008): Unique properties of mesoprefrontal neurons within a dual mesocorticolimbic dopamine system. Neuron. 2008 Mar 13;57(5):760-73. doi: 10.1016/j.neuron.2008.01.022. PMID: 18341995. ↥
Chiodo LA, Bannon MJ, Grace AA, Roth RH, Bunney BS (1984): Evidence for the absence of impulse-regulating somatodendritic and synthesis-modulating nerve terminal autoreceptors on subpopulations of mesocortical dopamine neurons. Neuroscience. 1984 May;12(1):1-16. doi: 10.1016/0306-4522(84)90133-7. PMID: 6462443. ↥
Mayer FP, Stewart A, Blakely RD (2023): Leaky lessons learned: Efflux prone dopamine transporter variant DAT Val559 reveals sex and circuit specific contributions of D2 receptor signaling to neuropsychiatric disease. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2023 Nov 21. doi: 10.1111/bcpt.13964. PMID: 37987120. ↥
Heinz (2000): Das dopaminerge Verstärkungssystem. Funktion, Interaktion mit anderen Neurotransmittersystemen und psychopathologische Korrelate. Seite 105 ↥ ↥
Deutch, Clark, Roth (1990): Prefrontal cortical dopamine depletion enhances the responsiveness of mesolimbic dopamine neurons to stress. Brain Res. 1990 Jun 25;521(1-2):311-5. ↥ ↥
Sikström, Söderlund (2007): Stimulus-dependent dopamine release in attention-deficit/hyperactivity disorder. Psychol Rev. 2007 Oct;114(4):1047-75. doi: 10.1037/0033-295X.114.4.1047. PMID: 17907872. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥
Söderlund, Sikström, Smart (2007): Listen to the noise: noise is beneficial for cognitive performance in ADHD. J Child Psychol Psychiatry. 2007 Aug;48(8):840-7. doi: 10.1111/j.1469-7610.2007.01749.x. PMID: 17683456. ↥ ↥
Abercrombie, Keefe, DiFrischia, Zigmond (1989): Differential effect of stress on in vivo dopamine release in striatum, nucleus accumbens, and medial frontal cortex. J Neurochem. 1989 May;52(5):1655-8. doi: 10.1111/j.1471-4159.1989.tb09224.x. PMID: 2709017. ↥ ↥
Kalivas, Duffy (1989): P. Similar effects of daily cocaine and stress on mesocorticolimbic dopamine neurotransmission in the rat. Biol Psychiatry. 1989 Apr 1;25(7):913-28. doi: 10.1016/0006-3223(89)90271-0. PMID: 2541803. Der Abstract gibt nur Werte bei mit Kokain vorbehandelten Ratten wieder. ↥ ↥
Marinelli, Le Moal, Piazza (1996): Acute pharmacological blockade of corticosterone secretion reverses food restriction-induced sensitization of the locomotor response to cocaine. Brain Res. 1996;724(2):251–255. doi:10.1016/0006-8993(96)00309-5 ↥ ↥
Deroche, Marinelli, Maccari, Le Moal, Simon, Piazza (1995): Stress-induced sensitization and glucocorticoids. I. Sensitization of dopamine-dependent locomotor effects of amphetamine and morphine depends on stress-induced corticosterone secretion. J Neurosci. 1995 Nov;15(11):7181-8. doi: 10.1523/JNEUROSCI.15-11-07181.1995. PMID: 7472472; PMCID: PMC6578077. ↥ ↥
Rougé-Pont, Marinelli, Le Moal, Simon, Piazza (1995): Stress-induced sensitization and glucocorticoids. II. Sensitization of the increase in extracellular dopamine induced by cocaine depends on stress-induced corticosterone secretion. J Neurosci. 1995 Nov;15(11):7189-95. doi: 10.1523/JNEUROSCI.15-11-07189.1995. PMID: 7472473; PMCID: PMC6578091. ↥ ↥
Deroche, Piazza, Casolini, Le Moal, Simon (1993): Sensitization to the psychomotor effects of amphetamine and morphine induced by food restriction depends on corticosterone secretion. Brain Res. 1993 May 21;611(2):352-6. doi: 10.1016/0006-8993(93)90526-s. PMID: 8334527. ↥ ↥
Deroche, Piazza, Casolini, Maccari, Le Moal, Simon (1992): Stress-induced sensitization to amphetamine and morphine psychomotor effects depend on stress-induced corticosterone secretion. Brain Res. 1992 Dec 11;598(1-2):343-8. doi: 10.1016/0006-8993(92)90205-n. PMID: 1486498. ↥ ↥
Müller (2007): Dopamin und kognitive Handlungssteuerung: Flexibilität und Stabilität in einem Set-Shifting Paradigma. Dissertation ↥ ↥ ↥ ↥
Westerink, de Boer, de Vries, Kruse, Long (1998): Antipsychotic drugs induce similar effects on the release of dopamine and noradrenaline in the medial prefrontal cortex of the rat brain. Eur J Pharmacol. 1998 Nov 13;361(1):27-33. doi: 10.1016/s0014-2999(98)00711-0. PMID: 9851538. ↥ ↥
Santiago, Machado, Cano (1993): Regulation of prefrontal cortical dopamine release by dopamine receptor agonists and antagonists. Eur J Pharmacol. 1993 Aug 3;239(1-3):83-91. doi: 10.1016/0014-2999(93)90979-r. PMID: 7901031. ↥ ↥
Ozaki, Nakahara, Miura, Kasahara, Nagatsu (1989): Effects of apomorphine on in vivo release of dopamine and its metabolites in the prefrontal cortex and the striatum, studied by a microdialysis method. J Neurochem. 1989 Dec;53(6):1861-4. doi: 10.1111/j.1471-4159.1989.tb09253.x. PMID: 2809596. ↥ ↥
Anzalone A, Lizardi-Ortiz JE, Ramos M, De Mei C, Hopf FW, Iaccarino C, Halbout B, Jacobsen J, Kinoshita C, Welter M, Caron MG, Bonci A, Sulzer D, Borrelli E (2012): Dual control of dopamine synthesis and release by presynaptic and postsynaptic dopamine D2 receptors. J Neurosci. 2012 Jun 27;32(26):9023-34. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0918-12.2012. PMID: 22745501; PMCID: PMC3752062. ↥
Berke (2018): What does dopamine mean? Nat Neurosci. 2018 Jun;21(6):787-793. doi: 10.1038/s41593-018-0152-y. PMID: 29760524; PMCID: PMC6358212., REVIEW ↥ ↥
Floresco, Yang, Phillips, Blaha (1998): Basolateral amygdala stimulation evokes glutamate receptor-dependent dopamine efflux in the nucleus accumbens of the anaesthetized rat. Eur J Neurosci. 1998 Apr;10(4):1241-51. doi: 10.1046/j.1460-9568.1998.00133.x. PMID: 9749778. ↥ ↥
Jones, Day, Aragona, Wheeler, Wightman, Carelli (2010): Basolateral amygdala modulates terminal dopamine release in the nucleus accumbens and conditioned responding. Biol Psychiatry. 2010 Apr 15;67(8):737-44. doi: 10.1016/j.biopsych.2009.11.006. PMID: 20044074; PMCID: PMC2849914. ↥ ↥
Ferris MJ, Milenkovic M, Liu S, Mielnik CA, Beerepoot P, John CE, España RA, Sotnikova TD, Gainetdinov RR, Borgland SL, Jones SR, Ramsey AJ (2014): Sustained N-methyl-d-aspartate receptor hypofunction remodels the dopamine system and impairs phasic signaling. Eur J Neurosci. 2014 Jul;40(1):2255-63. doi: 10.1111/ejn.12594. PMID: 24754704; PMCID: PMC4331169. ↥ ↥
Zweifel LS, Parker JG, Lobb CJ, Rainwater A, Wall VZ, Fadok JP, Darvas M, Kim MJ, Mizumori SJ, Paladini CA, Phillips PE, Palmiter RD (2009): Disruption of NMDAR-dependent burst firing by dopamine neurons provides selective assessment of phasic dopamine-dependent behavior. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 May 5;106(18):7281-8. doi: 10.1073/pnas.0813415106. PMID: 19342487; PMCID: PMC2678650. ↥
Sombers LA, Beyene M, Carelli RM, Wightman RM (2009): Synaptic overflow of dopamine in the nucleus accumbens arises from neuronal activity in the ventral tegmental area. J Neurosci. 2009 Feb 11;29(6):1735-42. doi: 10.1523/JNEUROSCI.5562-08.2009. PMID: 19211880; PMCID: PMC2673986. ↥
Johnson SW, Seutin V, North RA. Burst firing in dopamine neurons induced by N-methyl-D-aspartate: role of electrogenic sodium pump. Science. 1992 Oct 23;258(5082):665-7. doi: 10.1126/science.1329209. PMID: 1329209. ↥
Cachope, Mateo, Mathur, Irving, Wang, Morales, Lovinger, Cheer (2012): Selective activation of cholinergic interneurons enhances accumbal phasic dopamine release: setting the tone for reward processing. Cell Rep. 2012 Jul 26;2(1):33-41. doi: 10.1016/j.celrep.2012.05.011. PMID: 22840394; PMCID: PMC3408582. ↥ ↥
Threlfell, Lalic, Platt, Jennings, Deisseroth, Cragg (2012): Striatal dopamine release is triggered by synchronized activity in cholinergic interneurons. Neuron. 2012 Jul 12;75(1):58-64. doi: 10.1016/j.neuron.2012.04.038. PMID: 22794260. ↥ ↥
Min C, Zheng M, Zhang X, Guo S, Kwon KJ, Shin CY, Kim HS, Cheon SH, Kim KM (2015): N-linked Glycosylation on the N-terminus of the dopamine D2 and D3 receptors determines receptor association with specific microdomains in the plasma membrane. Biochim Biophys Acta. 2015 Jan;1853(1):41-51. doi: 10.1016/j.bbamcr.2014.09.024. PMID: 25289757. ↥
de Villiers AS, Russell VA, Sagvolden T, Searson A, Jaffer A, Taljaard JJ (1995): Alpha 2-adrenoceptor mediated inhibition of [3H]dopamine release from nucleus accumbens slices and monoamine levels in a rat model for attention-deficit hyperactivity disorder. Neurochem Res. 1995 Apr;20(4):427-33. doi: 10.1007/BF00973098. PMID: 7651580. ↥ ↥
Russell VA, Lamm MC, Allin R, de Villiers AS, Searson A, Taljaard JJ (1989): Effect of selective noradrenergic denervation on noradrenaline content and [3H]dopamine release in rat nucleus accumbens slices. Neurochem Res. 1989 Feb;14(2):169-72. doi: 10.1007/BF00969634. PMID: 2725817. ↥
Nurse B, Russell VA, Taljaard JJ (1984): Alpha 2 and beta-adrenoceptor agonists modulate [3H]dopamine release from rat nucleus accumbens slices: implications for research into depression. Neurochem Res. 1984 Sep;9(9):1231-8. doi: 10.1007/BF00973036. PMID: 6095129. ↥
Russell VA, Lamm MC, Taljaard JJ (1993): Lack of interaction between alpha 2-adrenoceptors and dopamine D2-receptors in mediating their inhibitory effects on [3H]dopamine release from rat nucleus accumbens slices. Neurochem Res. 1993 Mar;18(3):285-9. doi: 10.1007/BF00969084. PMID: 8097573. ↥
Grace (1991): Phasic versus tonic dopamine release and the modulation of dopamine system responsivity: a hypothesis for the etiology of schizophrenia. Neuroscience. 1991;41(1):1-24. doi: 10.1016/0306-4522(91)90196-u. PMID: 1676137. ↥
Keefe, Zigmond, Abercrombie (1991): In vivo regulation of extracellular dopamine in the neostriatum: influence of impulse activity and local excitatory amino acids. J Neural Transm Gen Sect. 1993;91(2-3):223-40. doi: 10.1007/bf01245233. PMID: 8099798.) ↥
Keefe, Zigmond, Abercrombie (1992): Extracellular dopamine in striatum: influence of nerve impulse activity in medial forebrain bundle and local glutamatergic input. Neuroscience. 1992;47(2):325-32. doi: 10.1016/0306-4522(92)90248-z. PMID: 1353620. ↥
Moghaddam, Gruen (1991): Do endogenous excitatory amino acids influence striatal dopamine release? Brain Res. 1991 Mar 29;544(2):329-30. doi: 10.1016/0006-8993(91)90074-6. PMID: 2039947. ↥
Moghaddam, Bolinao (1994): Glutamatergic antagonists attenuate ability of dopamine uptake blockers to increase extracellular levels of dopamine: implications for tonic influence of glutamate on dopamine release. Synapse. 1994 Dec;18(4):337-42. doi: 10.1002/syn.890180409. PMID: 7886626. ↥
Ferré, Agnati, Ciruela, Lluis, Woods, Fuxe, Franco (2007): Neurotransmitter receptor heteromers and their integrative role in ‘local modules’: the striatal spine module. Brain Res Rev. 2007 Aug;55(1):55-67. doi: 10.1016/j.brainresrev.2007.01.007. PMID: 17408563; PMCID: PMC2039920. ↥
Tye, Miller, Blaha (2013): Ventral tegmental ionotropic glutamate receptor stimulation of nucleus accumbens tonic dopamine efflux blunts hindbrain-evoked phasic neurotransmission: implications for dopamine dysregulation disorders. Neuroscience. 2013 Nov 12;252:337-45. doi: 10.1016/j.neuroscience.2013.08.010. PMID: 23962648. ↥
West, Galloway (1997): Endogenous nitric oxide facilitates striatal dopamine and glutamate efflux in vivo: role of ionotropic glutamate receptor-dependent mechanisms. Neuropharmacology. 1997 Nov-Dec;36(11-12):1571-81. doi: 10.1016/s0028-3908(97)00148-2. PMID: 9517428. ↥
Jansen, Hanusch, Pross, Hanff, Drabert, Bollenbach, Dugave, Carmann, Siefen, Emons, Juckel, Legenbauer, Tsikas, Lücke (2020): Enhanced Nitric Oxide (NO) and Decreased ADMA Synthesis in Pediatric ADHD and Selective Potentiation of NO Synthesis by Methylphenidate. J Clin Med. 2020 Jan 8;9(1):E175. doi: 10.3390/jcm9010175. PMID: 31936392. n = 85 ↥
Surmeier, Graybiel (2012): A feud that wasn’t: acetylcholine evokes dopamine release in the striatum. Neuron. 2012 Jul 12;75(1):1-3. doi: 10.1016/j.neuron.2012.06.028. PMID: 22794253; PMCID: PMC3461267. ↥
Zhang, Zhang, Liang, Siapas, Zhou, Dani (2009): Dopamine signaling differences in the nucleus accumbens and dorsal striatum exploited by nicotine. J Neurosci. 2009 Apr 1;29(13):4035-43. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0261-09.2009. PMID: 19339599; PMCID: PMC2743099. ↥ ↥
Brady, L., Thibeault, K.C., Lopez, A., Tat, J., Nolan, S.O., Siciliano, C.A., Calipari, E.S. (2022): Sex‐specific cholinergic regulation of dopamine release mechanisms through nicotinic receptors in the nucleus accumbens. The FASEB Journal, 36. ↥
Liu C, Cai X, Ritzau-Jost A, Kramer PF, Li Y, Khaliq ZM, Hallermann S, Kaeser PS (2022): An action potential initiation mechanism in distal axons for the control of dopamine release. Science. 2022 Mar 25;375(6587):1378-1385. doi: 10.1126/science.abn0532. PMID: 35324301; PMCID: PMC9081985. ↥
Brown (2016): Dopaminergic Transmission and Wake-Promoting Effects of Central Nervous System Stimulants. In: Monti, Pandi-Perumal, Chokroverty (Herausgeber) (2016): Dopamine and Sleep: Molecular, Functional, and Clinical Aspects, 19-38, 24 ↥ ↥ ↥
Gainetdinov, Hoener, Berry (2018): Trace Amines and Their Receptors. Pharmacol Rev. 2018 Jul;70(3):549-620. doi: 10.1124/pr.117.015305. PMID: 29941461. REVIEW ↥
Bradaia, Trube, Stalder, Norcross, Ozmen, Wettstein, Pinard, Buchy, Gassmann, Hoener, Bettler (2009): The selective antagonist EPPTB reveals TAAR1-mediated regulatory mechanisms in dopaminergic neurons of the mesolimbic system. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Nov 24;106(47):20081-6. doi: 10.1073/pnas.0906522106. PMID: 19892733; PMCID: PMC2785295. ↥
Lindemann, Meyer, Jeanneau, Bradaia, Ozmen, Bluethmann, Bettler, Wettstein, Borroni, Moreau, Hoener (2008): Trace amine-associated receptor 1 modulates dopaminergic activity. J Pharmacol Exp Ther. 2008 Mar;324(3):948-56. doi: 10.1124/jpet.107.132647. PMID: 18083911. ↥ ↥
Rebholz, Zhou, Nairn, Greengard, Flajolet (2013): Selective knockout of the casein kinase 2 in d1 medium spiny neurons controls dopaminergic function. Biol Psychiatry. 2013 Jul 15;74(2):113-21. doi: 10.1016/j.biopsych.2012.11.013. PMID: 23290496; PMCID: PMC3878430. ↥
Rial, Pamplona, Moreira, Moreira, Hipolide, Rodrigues, Dombrowski, Da Cunha, Agostinho, Takahashi, Walz, Cunha, Prediger (2014): Cellular prion protein is present in dopaminergic neurons and modulates the dopaminergic system. Eur J Neurosci. 2014 Aug;40(3):2479-86. doi: 10.1111/ejn.12600. PMID: 24766164. ↥ ↥
Ben-Jonathan (2020): Dopamine - Endocrine and Oncogenic Functions, S. 96. ↥
Calipari ES, Juarez B, Morel C, Walker DM, Cahill ME, Ribeiro E, Roman-Ortiz C, Ramakrishnan C, Deisseroth K, Han MH, Nestler EJ (2017): Dopaminergic dynamics underlying sex-specific cocaine reward. Nat Commun. 2017 Jan 10;8:13877. doi: 10.1038/ncomms13877. PMID: 28072417; PMCID: PMC5234081. ↥
Kikusui T, Faccidomo S, Miczek KA (2005): Repeated maternal separation: differences in cocaine-induced behavioral sensitization in adult male and female mice. Psychopharmacology (Berl). 2005 Mar;178(2-3):202-10. doi: 10.1007/s00213-004-1989-1. PMID: 15322726. ↥
Krentzel AA, Willett JA, Johnson AG, Meitzen J (2021): Estrogen receptor alpha, G-protein coupled estrogen receptor 1, and aromatase: Developmental, sex, and region-specific differences across the rat caudate-putamen, nucleus accumbens core and shell. J Comp Neurol. 2021 Mar;529(4):786-801. doi: 10.1002/cne.24978. PMID: 32632943; PMCID: PMC7775873. ↥
Almey A, Milner TA, Brake WG (2015): Estrogen receptors in the central nervous system and their implication for dopamine-dependent cognition in females. Horm Behav. 2015 Aug;74:125-38. doi: 10.1016/j.yhbeh.2015.06.010. PMID: 26122294; PMCID: PMC4820286. REVIEW ↥
Morissette M, Le Saux M, D’Astous M, Jourdain S, Al Sweidi S, Morin N, Estrada-Camarena E, Mendez P, Garcia-Segura LM, Di Paolo T (2008): Contribution of estrogen receptors alpha and beta to the effects of estradiol in the brain. J Steroid Biochem Mol Biol. 2008 Feb;108(3-5):327-38. doi: 10.1016/j.jsbmb.2007.09.011. PMID: 17936613. REVIEW ↥ ↥
Czoty PW, Riddick NV, Gage HD, Sandridge M, Nader SH, Garg S, Bounds M, Garg PK, Nader MA (2009): Effect of menstrual cycle phase on dopamine D2 receptor availability in female cynomolgus monkeys. Neuropsychopharmacology. 2009 Feb;34(3):548-54. doi: 10.1038/npp.2008.3. PMID: 18256593. ↥
Young EA, Becker JB (2009): Perspective: sex matters: gonadal steroids and the brain. Neuropsychopharmacology. 2009 Feb;34(3):537-8. doi: 10.1038/npp.2008.221. PMID: 19136977. ↥
Thompson TL, Moss RL (1997): Modulation of mesolimbic dopaminergic activity over the rat estrous cycle. Neurosci Lett. 1997 Jul 4;229(3):145-8. doi: 10.1016/s0304-3940(97)00450-3. PMID: 9237479. ↥
Dazzi L, Seu E, Cherchi G, Barbieri PP, Matzeu A, Biggio G (2007): Estrous cycle-dependent changes in basal and ethanol-induced activity of cortical dopaminergic neurons in the rat. Neuropsychopharmacology. 2007 Apr;32(4):892-901. doi: 10.1038/sj.npp.1301150. PMID: 16841076. ↥
de Jong M, Wynchank DSMR, van Andel E, Beekman ATF, Kooij JJS (2023): Female-specific pharmacotherapy in ADHD: premenstrual adjustment of psychostimulant dosage. Front Psychiatry. 2023 Dec 13;14:1306194. doi: 10.3389/fpsyt.2023.1306194. PMID: 38152361; PMCID: PMC10751335. ↥
Fink G, Sumner BE, Rosie R, Grace O, Quinn JP (1996): Estrogen control of central neurotransmission: effect on mood, mental state, and memory. Cell Mol Neurobiol. 1996 Jun;16(3):325-44. doi: 10.1007/BF02088099. PMID: 8818400. REVIEW ↥
Shanmugan S, Epperson CN (2014): Estrogen and the prefrontal cortex: towards a new understanding of estrogen’s effects on executive functions in the menopause transition. Hum Brain Mapp. 2014 Mar;35(3):847-65. doi: 10.1002/hbm.22218. PMID: 23238908; PMCID: PMC4104582. REVIEW ↥ ↥
Inagaki T, Gautreaux C, Luine V (2010): Acute estrogen treatment facilitates recognition memory consolidation and alters monoamine levels in memory-related brain areas. Horm Behav. 2010 Aug;58(3):415-26. doi: 10.1016/j.yhbeh.2010.05.013. PMID: 20553724; PMCID: PMC2917540. ↥
Becker JB, Perry AN, Westenbroek C (2012): Sex differences in the neural mechanisms mediating addiction: a new synthesis and hypothesis. Biol Sex Differ. 2012 Jun 7;3(1):14. doi: 10.1186/2042-6410-3-14. PMID: 22676718; PMCID: PMC3724495. ↥
Kuhn C, Johnson M, Thomae A, Luo B, Simon SA, Zhou G, Walker QD (2010): The emergence of gonadal hormone influences on dopaminergic function during puberty. Horm Behav. 2010 Jun;58(1):122-37. doi: 10.1016/j.yhbeh.2009.10.015. PMID: 19900453; PMCID: PMC2883625. REVIEW ↥
Santos-Toscano R, Arevalo MA, Garcia-Segura LM, Grassi D, Lagunas N (2023): Interaction of gonadal hormones, dopaminergic system, and epigenetic regulation in the generation of sex differences in substance use disorders: A systematic review. Front Neuroendocrinol. 2023 Oct;71:101085. doi: 10.1016/j.yfrne.2023.101085. PMID: 37543184. REVIEW ↥ ↥
Mermelstein PG (2009): Membrane-localised oestrogen receptor alpha and beta influence neuronal activity through activation of metabotropic glutamate receptors. J Neuroendocrinol. 2009 Mar;21(4):257-62. doi: 10.1111/j.1365-2826.2009.01838.x. PMID: 19207809; PMCID: PMC2805164. REVIEW ↥
Torterolo, Benedetto, Monti (2016): Functional Interactions Between MCHergic and Dopaminergic Neurons: Role in the Control of Wakefulness and Sleep. In: Monti, Pandi-Perumal, Chokroverty (Herausgeber) (2016): Dopamine and Sleep: Molecular, Functional, and Clinical Aspects, 47-63, 47 ↥
Smith, Qi, Svenningsson, Wade, Davis, Gehlert, Nomikos (2008): Behavioral and biochemical responses to d-amphetamine in MCH1 receptor knockout mice. Synapse. 2008 Feb;62(2):128-36. doi: 10.1002/syn.20473. PMID: 18000809. ↥
De Deurwaerdère P, Di Giovanni G (2017): Serotonergic modulation of the activity of mesencephalic dopaminergic systems: Therapeutic implications. Prog Neurobiol. 2017 Apr;151:175-236. doi: 10.1016/j.pneurobio.2016.03.004. PMID: 27013075. REVIEW ↥
Aquili L (2020): The Role of Tryptophan and Tyrosine in Executive Function and Reward Processing. Int J Tryptophan Res. 2020 Oct 22;13:1178646920964825. doi: 10.1177/1178646920964825. PMID: 33149600; PMCID: PMC7586026. REVIEW ↥ ↥ ↥
Dray A, Gonye TJ, Oakley NR, Tanner T (1976):Evidence for the existence of a raphe projection to the substantia nigra in rat. Brain Res. 1976 Aug 20;113(1):45-57. doi: 10.1016/0006-8993(76)90005-6. PMID: 953733. ↥
Di Mascio M, Esposito E (1997): The degree of inhibition of dopaminergic neurons in the ventral tegmental area induced by selective serotonin reuptake inhibitors is a function of the density-power-spectrum of the interspike interval. Neuroscience. 1997 Aug;79(4):957-61. doi: 10.1016/s0306-4522(97)00108-5. PMID: 9219958. ↥
Di Matteo V, Di Giovanni G, Di Mascio M, Esposito E (1998): Selective blockade of serotonin2C/2B receptors enhances dopamine release in the rat nucleus accumbens. Neuropharmacology. 1998;37(2):265-72. doi: 10.1016/s0028-3908(98)00014-8. PMID: 9680252. ↥
Gervais J, Rouillard C (2000): Dorsal raphe stimulation differentially modulates dopaminergic neurons in the ventral tegmental area and substantia nigra. Synapse. 2000 Mar 15;35(4):281-91. doi: 10.1002/(SICI)1098-2396(20000315)35:4<281::AID-SYN6>3.0.CO;2-A. PMID: 10657038. ↥
Kelland MD, Freeman AS, Chiodo LA (1990): Serotonergic afferent regulation of the basic physiology and pharmacological responsiveness of nigrostriatal dopamine neurons. J Pharmacol Exp Ther. 1990 May;253(2):803-11. PMID: 1971022. ↥
Pessia M, Jiang ZG, North RA, Johnson SW (1994): Actions of 5-hydroxytryptamine on ventral tegmental area neurons of the rat in vitro. Brain Res. 1994 Aug 22;654(2):324-30. doi: 10.1016/0006-8993(94)90495-2. PMID: 7987681) ↥
Di Matteo V, Di Mascio M, Di Giovanni G, Esposito E (2000): Acute administration of amitriptyline and mianserin increases dopamine release in the rat nucleus accumbens: possible involvement of serotonin2C receptors. Psychopharmacology (Berl). 2000 May;150(1):45-51. doi: 10.1007/s002130000420. PMID: 10867975. ↥
Moreau JL, Bourson A, Jenck F, Martin JR, Mortas P. Curative effects of the atypical antidepressant mianserin in the chronic mild stress-induced anhedonia model of depression. J Psychiatry Neurosci. 1994 Jan;19(1):51-6. PMID: 8148366; PMCID: PMC1188562. ↥
Nestler EJ, Carlezon WA Jr (2005): The mesolimbic dopamine reward circuit in depression. Biol Psychiatry. 2006 Jun 15;59(12):1151-9. doi: 10.1016/j.biopsych.2005.09.018. PMID: 16566899. REVIEW ↥
Korotkova, Brown, Sergeeva, Ponomarenko, Haas (2006): Effects of arousal- and feeding-related neuropeptides on dopaminergic and GABAergic neurons in the ventral tegmental area of the rat. Eur J Neurosci. 2006 May;23(10):2677-85. doi: 10.1111/j.1460-9568.2006.04792.x. Erratum in: Eur J Neurosci. 2006 Jun;23(12):3407. PMID: 16817870. ↥ ↥ ↥ ↥
Härfstrand, Fuxe, Cintra, Agnati, Zini, Wikstrom, Okret (1986): Glucocorticoid receptor immunoreactivity in monoaminergic neurons of rat brain. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, 83, 24: 9779-9783. ↥
Fuxe, Agnati, Jannsson, von-Euler, Tanganelli (1990): Regulation of endocrine function by the nicotinic cholinergic receptor. Ciba-Foundation-Symposium, pp. 127-130. ↥
Bieger (2011): Neurostressguide, Seite 11 ↥
Xie L, Gelfand, Mathew, Atem, Delclos, Messiah (2022): Association of Corticosteroid Use and Attention Deficit/Hyperactivity Disorder in Asthmatic Children Varies by Age. J Asthma. 2022 Jun 13:1-13. doi: 10.1080/02770903.2022.2089995. PMID: 35696551. ↥
Speranza, di Porzio, Viggiano, de Donato, Volpicelli (2021): Dopamine: The Neuromodulator of Long-Term Synaptic Plasticity, Reward and Movement Control. Cells. 2021 Mar 26;10(4):735. doi: 10.3390/cells10040735. PMID: 33810328; PMCID: PMC8066851. REVIEW ↥
Yang (2021): Functional Selectivity of Dopamine D1 Receptor Signaling: Retrospect and Prospect. Int J Mol Sci. 2021 Nov 3;22(21):11914. doi: 10.3390/ijms222111914. PMID: 34769344; PMCID: PMC8584964. REVIEW ↥
Yang Y, Kocher, Lewis, Mailman (2022): Dose-Dependent Regulation on Prefrontal Neuronal Working Memory by Dopamine D1 Agonists: Evidence of Receptor Functional Selectivity-Related Mechanisms. Front Neurosci. 2022 Jun 16;16:898051. doi: 10.3389/fnins.2022.898051. PMID: 35784852; PMCID: PMC9244699. ↥
Yang Y (2021): Functional Selectivity of Dopamine D1 Receptor Signaling: Retrospect and Prospect. Int J Mol Sci. 2021 Nov 3;22(21):11914. doi: 10.3390/ijms222111914. PMID: 34769344; PMCID: PMC8584964. ↥
Fon, Pothos, Sun, Killeen, Sulzer, Edwards (1997): Vesicular transport regulates monoamine storage and release but is not essential for amphetamine action. Neuron. 1997 Dec;19(6):1271-83. doi: 10.1016/s0896-6273(00)80418-3. PMID: 9427250. ↥
Tritsch, Ding, Sabatini (2012):. Dopaminergic neurons inhibit striatal output through non-canonical release of GABA. Nature. 2012 Oct 11;490(7419):262-6. doi: 10.1038/nature11466. PMID: 23034651; PMCID: PMC3944587. ↥
Liu, Kaeser (2019): Mechanisms and regulation of dopamine release. Curr Opin Neurobiol. 2019 Aug;57:46-53. doi: 10.1016/j.conb.2019.01.001. PMID: 30769276; PMCID: PMC6629510. ↥
Blum, Chen, Braverman, Comings, Chen, Arcuri, Blum, Downs, Waite, Notaro, Lubar, Williams, Prihoda, Palomo, Oscar-Berman (2008): Attention-deficit-hyperactivity disorder and reward deficiency syndrome. Neuropsychiatr Dis Treat. 2008 Oct;4(5):893-918. doi: 10.2147/ndt.s2627. PMID: 19183781; PMCID: PMC2626918. ↥ ↥ ↥
Enard, Gehre, Hammerschmidt, Hölter, Blass, Somel, Brückner, Schreiweis, Winter, Sohr, Becker, Wiebe, Nickel, Giger, Müller, Groszer, Adler, Aguilar, Bolle, Calzada-Wack, Dalke, Ehrhardt, Favor, Fuchs, Gailus-Durner, Hans, Hölzlwimmer, Javaheri, Kalaydjiev, Kallnik, Kling, Kunder, Mossbrugger, Naton, Racz, Rathkolb, Rozman, Schrewe, Busch, Graw, Ivandic, Klingenspor, Klopstock, Ollert, Quintanilla-Martinez, Schulz, Wolf, Wurst, Zimmer, Fisher, Morgenstern, Arendt, de Angelis, Fischer, Schwarz, Pääbo (2009): A humanized version of Foxp2 affects cortico-basal ganglia circuits in mice. Cell. 2009 May 29;137(5):961-71. doi: 10.1016/j.cell.2009.03.041. PMID: 19490899. ↥
Tang Q, Assali DR, Güler AD, Steele AD (2022): Dopamine systems and biological rhythms: Let’s get a move on. Front Integr Neurosci. 2022 Jul 27;16:957193. doi: 10.3389/fnint.2022.957193. PMID: 35965599; PMCID: PMC9364481. REVIEW ↥
Florea, Palimariciuc, Cristofor, Dobrin, Chiriță, Bîrsan, Dobrin, Pădurariu (2022): Oxytocin: Narrative Expert Review of Current Perspectives on the Relationship with Other Neurotransmitters and the Impact on the Main Psychiatric Disorders. Medicina (Kaunas). 2022 Jul 11;58(7):923. doi: 10.3390/medicina58070923. PMID: 35888641; PMCID: PMC9318841. REVIEW ↥
Patak, Faraone, Zhang-James (2020): Sodium hydrogen exchanger 9 NHE9 (SLC9A9) and its emerging roles in neuropsychiatric comorbidity. Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2020 Jul;183(5):289-305. doi: 10.1002/ajmg.b.32787. PMID: 32400953. ↥
Xie X, Jhaveri, Ding M, Hughes, Toth, Ramkumar (2007): Expression of striatal adenosine and dopamine receptors in mice deficient in the p50 subunit of NF-kappaB. Life Sci. 2007 Sep 8;81(13):1031-41. doi: 10.1016/j.lfs.2007.07.031. PMID: 17869311; PMCID: PMC2083656. ↥
Scheggi S, Concas L, Corsi S, Carta M, Melis M, Frau R (2024): Expanding the therapeutic potential of neuro(active)steroids: a promising strategy for hyperdopaminergic behavioral phenotypes. Neurosci Biobehav Rev. 2024 Sep;164:105842. doi: 10.1016/j.neubiorev.2024.105842. PMID: 39103066. REVIEW ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Pérez-Neri I, Montes S, Ojeda-López C, Ramírez-Bermúdez J, Ríos C. Modulation of neurotransmitter systems by dehydroepiandrosterone and dehydroepiandrosterone sulfate: mechanism of action and relevance to psychiatric disorders. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2008 Jul 1;32(5):1118-30. doi: 10.1016/j.pnpbp.2007.12.001. PMID: 18280022. REVIEW ↥
Pérez-Neri I, Méndez-Sánchez I, Montes S, Ríos C. Acute dehydroepiandrosterone treatment exerts different effects on dopamine and serotonin turnover ratios in the rat corpus striatum and nucleus accumbens. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2008 Aug 1;32(6):1584-9. doi: 10.1016/j.pnpbp.2008.06.002. PMID: 18585426. ↥
Dornellas APS, Macedo GC, McFarland MH, Gómez-A A, O’Buckley TK, Da Cunha C, Morrow AL, Robinson DL (2021): Allopregnanolone Decreases Evoked Dopamine Release Differently in Rats by Sex and Estrous Stage. Front Pharmacol. 2021 Jan 14;11:608887. doi: 10.3389/fphar.2020.608887. PMID: 33519475; PMCID: PMC7840599. ↥
Motzo C, Porceddu ML, Maira G, Flore G, Concas A, Dazzi L, Biggio G (1996): Inhibition of basal and stress-induced dopamine release in the cerebral cortex and nucleus accumbens of freely moving rats by the neurosteroid allopregnanolone. J Psychopharmacol. 1996 Jan;10(4):266-72. doi: 10.1177/026988119601000402. PMID: 22302972. ↥
Rougé-Pont F, Mayo W, Marinelli M, Gingras M, Le Moal M, Piazza PV (2002): The neurosteroid allopregnanolone increases dopamine release and dopaminergic response to morphine in the rat nucleus accumbens. Eur J Neurosci. 2002 Jul;16(1):169-73. doi: 10.1046/j.1460-9568.2002.02084.x. PMID: 12153544. ↥
Wong P, Chang CC, Marx CE, Caron MG, Wetsel WC, Zhang X (2012): Pregnenolone rescues schizophrenia-like behavior in dopamine transporter knockout mice. PLoS One. 2012;7(12):e51455. doi: 10.1371/journal.pone.0051455. PMID: 23240026; PMCID: PMC3519851. ↥
Vallée M, Vitiello S, Bellocchio L, Hébert-Chatelain E, Monlezun S, Martin-Garcia E, Kasanetz F, Baillie GL, Panin F, Cathala A, Roullot-Lacarrière V, Fabre S, Hurst DP, Lynch DL, Shore DM, Deroche-Gamonet V, Spampinato U, Revest JM, Maldonado R, Reggio PH, Ross RA, Marsicano G, Piazza PV (2014): Pregnenolone can protect the brain from cannabis intoxication. Science. 2014 Jan 3;343(6166):94-8. doi: 10.1126/science.1243985. Erratum in: Science. 2014 Feb 28;343(6174):969. PMID: 24385629; PMCID: PMC4057431. ↥ ↥
Marx CE, Lee J, Subramaniam M, Rapisarda A, Bautista DC, Chan E, Kilts JD, Buchanan RW, Wai EP, Verma S, Sim K, Hariram J, Jacob R, Keefe RS, Chong SA (2014): Proof-of-concept randomized controlled trial of pregnenolone in schizophrenia. Psychopharmacology (Berl). 2014 Sep;231(17):3647-62. doi: 10.1007/s00213-014-3673-4. PMID: 25030803. ↥
Frau R, Miczán V, Traccis F, Aroni S, Pongor CI, Saba P, Serra V, Sagheddu C, Fanni S, Congiu M, Devoto P, Cheer JF, Katona I, Melis M (2019): Prenatal THC exposure produces a hyperdopaminergic phenotype rescued by pregnenolone. Nat Neurosci. 2019 Dec;22(12):1975-1985. doi: 10.1038/s41593-019-0512-2. PMID: 31611707; PMCID: PMC6884689. ↥
Vallée M (2016): Neurosteroids and potential therapeutics: Focus on pregnenolone. J Steroid Biochem Mol Biol. 2016 Jun;160:78-87. doi: 10.1016/j.jsbmb.2015.09.030. PMID: 26433186. REVIEW ↥
Ford CP, Gantz SC, Phillips PE, Williams JT (2010): Control of extracellular dopamine at dendrite and axon terminals. J Neurosci. 2010 May 19;30(20):6975-83. doi: 10.1523/JNEUROSCI.1020-10.2010. PMID: 20484639; PMCID: PMC2883253. ↥
Takahashi S, Inamura K, Yarimizu J, Yamazaki M, Murai N, Ni K (2017): Neurochemical and neuropharmacological characterization of ASP2905, a novel potent selective inhibitor of the potassium channel KCNH3. Eur J Pharmacol. 2017 Sep 5;810:26-35. doi: 10.1016/j.ejphar.2017.05.045. PMID: 28552344. ↥
Takahashi S, Okamura A, Yamazaki M, Ni K (2020): ASP2905, a specific inhibitor of the potassium channel Kv12.2 encoded by the Kcnh3 gene, is psychoactive in mice. Behav Brain Res. 2020 Jan 27;378:112315. doi: 10.1016/j.bbr.2019.112315. PMID: 31654662. ↥
Takahashi, Ohmiya, Honda, Ni (2018): The KCNH3 inhibitor ASP2905 shows potential in the treatment of attention deficit/hyperactivity disorder. PLoS One. 2018 Nov 21;13(11):e0207750. doi: 10.1371/journal.pone.0207750. eCollection 2018. ↥
Cordeira JW, Frank L, Sena-Esteves M, Pothos EN, Rios M (2010): Brain-derived neurotrophic factor regulates hedonic feeding by acting on the mesolimbic dopamine system. J Neurosci. 2010 Feb 17;30(7):2533-41. doi: 10.1523/JNEUROSCI.5768-09.2010. PMID: 20164338; PMCID: PMC2846779. ↥
Bosse KE, Maina FK, Birbeck JA, France MM, Roberts JJ, Colombo ML, Mathews TA (2012): Aberrant striatal dopamine transmitter dynamics in brain-derived neurotrophic factor-deficient mice. J Neurochem. 2012 Feb;120(3):385-95. doi: 10.1111/j.1471-4159.2011.07531.x. PMID: 21988371; PMCID: PMC3385875. ↥
Kramer ER, Liss B (2015): GDNF-Ret signaling in midbrain dopaminergic neurons and its implication for Parkinson disease. FEBS Lett. 2015 Dec 21;589(24 Pt A):3760-72. doi: 10.1016/j.febslet.2015.11.006. PMID: 26555190. REVIEW ↥
Gash DM, Zhang Z, Cass WA, Ovadia A, Simmerman L, Martin D, Russell D, Collins F, Hoffer BJ, Gerhardt GA (1995): Morphological and functional effects of intranigrally administered GDNF in normal rhesus monkeys. J Comp Neurol. 1995 Dec 18;363(3):345-58. doi: 10.1002/cne.903630302. PMID: 8847404. ↥
Salvatore MF, Zhang JL, Large DM, Wilson PE, Gash CR, Thomas TC, Haycock JW, Bing G, Stanford JA, Gash DM, Gerhardt GA (2004): Striatal GDNF administration increases tyrosine hydroxylase phosphorylation in the rat striatum and substantia nigra. J Neurochem. 2004 Jul;90(1):245-54. doi: 10.1111/j.1471-4159.2004.02496.x. PMID: 15198683. ↥
Pothos EN, Davila V, Sulzer D (1998): Presynaptic recording of quanta from midbrain dopamine neurons and modulation of the quantal size. J Neurosci. 1998 Jun 1;18(11):4106-18. doi: 10.1523/JNEUROSCI.18-11-04106.1998. PMID: 9592091; PMCID: PMC6792796. ↥
Sulzer D, Cragg SJ, Rice ME (2016): Striatal dopamine neurotransmission: regulation of release and uptake. Basal Ganglia. 2016 Aug;6(3):123-148. doi: 10.1016/j.baga.2016.02.001. PMID: 27141430; PMCID: PMC4850498. REVIEW ↥ ↥
Liu S, Borgland SL (2019): Insulin actions in the mesolimbic dopamine system. Exp Neurol. 2019 Oct;320:113006. doi: 10.1016/j.expneurol.2019.113006. PMID: 31279911. REVIEW ↥
Stouffer MA, Woods CA, Patel JC, Lee CR, Witkovsky P, Bao L, Machold RP, Jones KT, de Vaca SC, Reith ME, Carr KD, Rice ME (2015): Insulin enhances striatal dopamine release by activating cholinergic interneurons and thereby signals reward. Nat Commun. 2015 Oct 27;6:8543. doi: 10.1038/ncomms9543. PMID: 26503322; PMCID: PMC4624275. ↥ ↥ ↥
Mebel DM, Wong JC, Dong YJ, Borgland SL (2012): Insulin in the ventral tegmental area reduces hedonic feeding and suppresses dopamine concentration via increased reuptake. Eur J Neurosci. 2012 Aug;36(3):2336-46. doi: 10.1111/j.1460-9568.2012.08168.x. PMID: 22712725; PMCID: PMC5239666. ↥
Labouèbe G, Liu S, Dias C, Zou H, Wong JC, Karunakaran S, Clee SM, Phillips AG, Boutrel B, Borgland SL (2013): Insulin induces long-term depression of ventral tegmental area dopamine neurons via endocannabinoids. Nat Neurosci. 2013 Mar;16(3):300-8. doi: 10.1038/nn.3321. PMID: 23354329; PMCID: PMC4072656. ↥
Sallam NA, Borgland SL (2021): Insulin and endocannabinoids in the mesolimbic system. J Neuroendocrinol. 2021 Apr;33(4):e12965. doi: 10.1111/jne.12965. PMID: 33856071. REVIEW ↥
Könner AC, Hess S, Tovar S, Mesaros A, Sánchez-Lasheras C, Evers N, Verhagen LA, Brönneke HS, Kleinridders A, Hampel B, Kloppenburg P, Brüning JC (2011): Role for insulin signaling in catecholaminergic neurons in control of energy homeostasis. Cell Metab. 2011 Jun 8;13(6):720-8. doi: 10.1016/j.cmet.2011.03.021. PMID: 21641553. ↥
Branch SY, Goertz RB, Sharpe AL, Pierce J, Roy S, Ko D, Paladini CA, Beckstead MJ (2013): Food restriction increases glutamate receptor-mediated burst firing of dopamine neurons. J Neurosci. 2013 Aug 21;33(34):13861-72. doi: 10.1523/JNEUROSCI.5099-12.2013. PMID: 23966705; PMCID: PMC3755722. ↥
Fuller, Burrell, Yee, Liyanagama, Lipski, Wickens, Hyland (2019): Role of homeostatic feedback mechanisms in modulating methylphenidate actions on phasic dopamine signaling in the striatum of awake behaving rats. Prog Neurobiol. 2019 Nov;182:101681. doi: 10.1016/j.pneurobio.2019.101681. PMID: 31412279. ↥
Covey, Juliano, Garris (2013): Amphetamine elicits opposing actions on readily releasable and reserve pools for dopamine. PLoS One. 2013 May 3;8(5):e60763. doi: 10.1371/journal.pone.0060763. PMID: 23671560; PMCID: PMC3643976. ↥ ↥ ↥ ↥
Daberkow, Brown, Bunner, Kraniotis, Doellman, Ragozzino, Garris, Roitman (2013): Amphetamine paradoxically augments exocytotic dopamine release and phasic dopamine signals. J Neurosci. 2013 Jan 9;33(2):452-63. doi: 10.1523/JNEUROSCI.2136-12.2013. PMID: 23303926; PMCID: PMC3711765. ↥ ↥ ↥ ↥ ↥
Ramsson, Covey, Daberkow, Litherland, Juliano, Garris (2011): Amphetamine augments action potential-dependent dopaminergic signaling in the striatum in vivo. J Neurochem. 2011 Jun;117(6):937-48. doi: 10.1111/j.1471-4159.2011.07258.x. PMID: 21443523; PMCID: PMC3134290. ↥
May, Kuhr, Wightman (1988): Differentiation of dopamine overflow and uptake processes in the extracellular fluid of the rat caudate nucleus with fast-scan in vivo voltammetry. J Neurochem. 1988 Oct;51(4):1060-9. doi: 10.1111/j.1471-4159.1988.tb03069.x. PMID: 2971098. ↥
Shi, Pun, Zhang, Jones, Bunney (2000): Dual effects of D-amphetamine on dopamine neurons mediated by dopamine and nondopamine receptors. J Neurosci. 2000 May 1;20(9):3504-11. doi: 10.1523/JNEUROSCI.20-09-03504.2000. PMID: 10777813; PMCID: PMC6773133. ↥
Paladini, Fiorillo, Morikawa, Williams (2001): Amphetamine selectively blocks inhibitory glutamate transmission in dopamine neurons. Nat Neurosci. 2001 Mar;4(3):275-81. doi: 10.1038/85124. PMID: 11224544. ↥
Ramsson, Howard, Covey, Garris (2011): High doses of amphetamine augment, rather than disrupt, exocytotic dopamine release in the dorsal and ventral striatum of the anesthetized rat. J Neurochem. 2011 Dec;119(6):1162-72. doi: 10.1111/j.1471-4159.2011.07407.x. PMID: 21806614; PMCID: PMC3213283. ↥ ↥
Sulzer (2011): How addictive drugs disrupt presynaptic dopamine neurotransmission. Neuron. 2011 Feb 24;69(4):628-49. doi: 10.1016/j.neuron.2011.02.010. PMID: 21338876; PMCID: PMC3065181. REVIEW ↥
Fleckenstein, Volz, Riddle, Gibb, Hanson (2007): New insights into the mechanism of action of amphetamines. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2007;47:681-98. doi: 10.1146/annurev.pharmtox.47.120505.105140. PMID: 17209801. REVIEW ↥
Rizzoli, Betz (2005): Synaptic vesicle pools. Nat Rev Neurosci. 2005 Jan;6(1):57-69. doi: 10.1038/nrn1583. PMID: 15611727. REVIEW ↥
Shoblock, Maisonneuve, Glick (2004): Differential interactions of desipramine with amphetamine and methamphetamine: evidence that amphetamine releases dopamine from noradrenergic neurons in the medial prefrontal cortex. Neurochem Res. 2004 Jul;29(7):1437-42. doi: 10.1023/b:nere.0000026409.76261.f3. PMID: 15202777. ↥