Header Image
Weitere Rezeptoren, an denen Cannabinoide binden

Inhaltsverzeichnis

Weitere Rezeptoren, an denen Cannabinoide binden

Cannabinoide binden nicht nur an den klassischen Cannabinoid-Rezeptoren (siehe oben), sondern auch an weiteren Rezeptoren.

1. TRPV1

Manche Cannabinoide binden auch an den TRPV1 (transient receptor potential cation channel subfamily V member 1, Transienter Rezeptor-Potential-Kationenkanal der Unterfamilie V (für vanilloid), Subtyp 1, veraltet Vanilloid Receptor 1 (VR1) oder Capsaicin-Rezeptor). Der TRPV1 wurde 1997 erstmals beschrieben.1
TRPV1 ist in erster Linie ein peripherer Schmerzrezeptor. Er regiert auf verschiedene Umweltfaktoren und Agonisten, weshalb sich alle diese Reize vergleichbar anfühlen (brennende Schärfe ebenso wie Verbrennungen durch Hitze oder Brennen durch Säure).
TRPV1 ist ein polymodaler Ionenkanal. TRPV1 wird durch verschiedene physikalische oder chemische) Reize aktiviert:2

  • Geschmacksschärfe
  • Temperaturen ab 42 Grad
  • pH-Wert unter 5,9
  • Spannung
  • mechanische Kraft
  • Agonisten
    • Capsaicin (Paprika- und Chilischoten)
    • Verschiedene Toxine34
      • Psalmotoxine
      • Vanillotoxine (Tarantel, Psalmopoeus cambridgei)
      • DkTx
      • RhTx
      • BmP01
      • Echis coloratus Toxine
      • APHCs
      • HCRG21
      • Botulinum-Neurotoxin
      • Resiniferatoxin (Wolfsmilchgewächse)5
      • Skorpiongift
      • Spinnentoxin
      • Ciguatera-Fischvergiftung (CFP)
      • neurotoxische Schalentiervergiftung (NSP)
      • Latoia consocia Raupengift6

Im Gehirn hat TRPV1 keine Rolle in der Schmerzempfindung.
Wir stellen im Folgenden insbesondere Wirkungen und Wechselwirkungen in Bezug auf Dopamin dar.

TRPV1 findet sich auf dopaminergen Neuronen im VTA, insbesondere während der Geburt.
TRPV1 vermittelt verschiedene dopaminerg beeinflusste Wirkungen:

  • TRPV1 beeinflusste die Empfindlichkeit gegenüber Amphetamin.7
  • Eine striatale TRPV1-Aktivierung durch Paracetamol verbessert durch D2Rezeptor-Antagonisten ausgelöste orofaziale Dyskinesie.8
  • TRPV1 auf Astrozyten rettet nigrale Dopamin-Neuronen bei Parkinson, durch eine von TRPV1 vermittelte körpereigene Produktion des ziliaren neurotrophen Faktors (CNTF)9

TRPV1 finden sich im Gehirn an Stellen, die aufgrund der Blut-Hirn-Schranke nicht unbedingt durch klassische Entzündungsvorgänge aktiviert werden10, wie:11

  • Nucleus tractus solitarius
  • Area postrema
  • Locus coeruleus
  • präoptischer Bereich des Hypothalamus
  • viele kortikale Regionen
    • u.a. in Pyramidalneuronen12
  • limbisches System
    • Hippocampus
      • insbesondere auf Pyramidalneuronen12
    • zentrale Amygdala
    • mediale und laterale Habenula
  • Substantia nigra
  • Kleinhirn
  • Thalamuskerne
  • inferiore Olive
  • Bulbus olfactorius5
  • Striatum5
    • in Fasern und postsynaptisch13
  • Mesencephalon5
  • periaquäduktales Grau5
  • Hinterhirn12

TRPV1 finden sich in12

  • Synapsen (überwiegend, aber nicht ausschließlich in postsynaptischen dendritischen Dornen)
    • prä- und postsynaptisch.14
  • an den Endfüßen von Astrozyten
  • in Perizyten
  • in Neuronen

Endogene TRPV1-Agonisten sind:15

  • 9(10)-EpOME (9(10)-Epoxy-12Z-Octadecensäure, Epoxy-Metabolit der Linolsäure)
  • 9, 10-DiHOME (9,10-Dihydroxy-12Z-Octadecensäure, Hydroxy-Metabolit der Linolsäure)
  • 9-HODE (9-Hydroxy-10E,12Z-Octadecadiensäure, Hydroxy-Metabolit der Linolsäure)
  • 9-oxoODE (9-oxo-10E,12Z-Octadecadiensäure, Epoxy-Metabolit der Linolsäure)
  • 12(13)-EpOME (12(13)-Epoxy-9Z-Octadecensäure, Epoxy-Metabolit der Linolsäure)
  • 12(S)-HPETE (12(S)-Hydroperoxyeicosatetraensäure)
  • 12, 13-DiHOME (12,13-Dihydroxy-9Z-Octadecensäure)
  • 12/15 -LOX (12/15-Lipoxygenase)
  • 13-HODE (13-Hydroxy-9Z, 11E-Octadecadiensäure, LA-Derivat)
  • 13-oxoODE (13-oxo-9Z,11E-Octadecadiensäure)
  • 20-HEPE (20-Hydroxyeicosapentaensäure, abgeleitet von EPA)
  • 20-HETE (20-Hydroxyeicosatetraensäure, abgeleitet von AA)
  • 22-HDoHE (22-Hydroxydocosahexaensäure, abgeleitet von DHA)
  • α-Linolensäure (ALA)
  • Anandamid (AEA)
  • Arachidonsäure (AA)
  • Cyclooxygenase-1,-2 (COX-1,-2)
  • Cytochrom P450 (CYP450)
  • Docosahexaensäure (DHA)
  • Eicosapentaensäure (EPA)
  • Epoxyeicosatriensäuren (EETs)
  • Hepoxilin A3 (HXA3)
  • Hepoxilin B3 (HXB3)
  • Hydroxyeicosatetraensäuren (HETEs)
  • Leukotrien B4 (LTB4)16
  • Linolsäure (LA)
  • Lipoxygenase vom Epidermistyp 3 (eLOX-3)
  • Lysophosphatidsäure (LPA)
  • Mehrfach ungesättigte Fettsäuren (PUFAs)
  • N-Acylaminosäuren/Neurotransmitter (NAANs)
  • N-Acylethanolamine (NAEs)
  • N-Acylphosphatidylethanolamine (NAPEs)
  • N-Arachidonoyl-Dopamin (NADA)16
  • N-Arachidonoyl-GABA (A-GABA)
  • Natriumhydrogensulfid (NaHS)
  • N-Docosahexaenoyl GABA (D-GABA)
  • N-Linoleoyl-GABA (L-GABA)
  • Oleoyl-Ethanolamin (OEA oder NOE)
  • Oxytocin
  • Palmitoylethanolamid (PEA)
  • Schwefelwasserstoff (H2S)

Exogene TRPV1-Agonisten:

  • Alkohol17
  • AM404
    • FAAH-Inhibitoren scheinen auch als TRPV1-Agonisten zu wirken.18
  • Arvanil (AR) synthetischer „hybrider“ Agonist von CB1R und TRPV119
  • Capsaicin (CP)19
  • CBD (Aktivierung/Desensibilisierung)
    • TRPV1-Agonist
      • darüber möglicherweise antipsychotische Wirkung20
    • TRPA1 (Ankyrin-Typ-1; Aktivierung/Desensibilisierung)
    • TRPV2 (Vanilloid-Typ-2; Aktivierung/Desensibilisierung)
    • TRPM8 (Melastatin-Typ-8; Hemmung)
  • D3, Vitamin D21
    • Partialagonist
  • Koffein (1,3,7-Trimethylxanthin)2217
    • TRPV1-Agonist23
    • TRPA1-Agonist bei Nagetieren23
    • TRPA1-Antagonist bei Menschen23
  • Olvanil (OL)19
    • Capsaicinderivat

TRPV1-Antagonisten:

  • Capsazepin
    • blockierte die schmerzlindernde Wirkung von CBD24
    • kompetitiver Antagonist für Capsaicin und Resiniferatoxin5
  • (E)-CBG (Cannabigerol)2526
    • schwacher TRPV1- und TRPV2-Agonist
  • Iodo-Rsiniferatoxin5
    • kompetitiver Antagonist
  • Rutheniumrot5

Dopamin moduliert TRPV127

  • D1-/D5-Agonisten hemmten das durch Capsaicin indizierte TRPV1-Signal
  • ein D2-Agonist veränderte das TRPV1-Signal nicht

2. PPARα (Peroxisome Proliferator-Activated Receptor alpha)

Es sind drei humane Isoformen von PPAR bekannt: PPAR-α (Alpha), PPAR-β/δ (Beta oder Delta) und PPAR-γ (Gamma). Andere Namen sind NR1C1, NR1C2 und NR1C3.28

Vorkommen von PPARα:2930
PPAR befinden sich im inneren von Zellen. Liganden müssen daher zunächst von der Zelle aufgenommen worden sein.31

  • PFC
    • PPARα (und PPARγ) finden sich auf 70 % der Dopamin-Neuronen im Mittelhirn und modulieren Dopamin- und Cannabinoid-vermitteltes Verhalten bei Mäusen32
  • Basalganglien
  • Nucleus accumbens
    • PPARα (und PPARγ) finden sich nicht auf GABA-Neuronen im Nucleus accumbens32
  • Amygdala
    • PPARα finden sich auf ~60 % der glutamatergen Neuronen32
    • PPARγ finden sich auf ~60 % der GABA-Neuronen32
  • VTA
  • Thalamuskerne
  • Hppocampus (geringer)
    • in CA1, CA2, CA3 und Gyrus dentatus

2.1. Regelbereiche von PPARα

Regelbereiche von PPARα sind u.a.:2930

  • Modulation von VTA und Amygdala
  • Belohnung
    • Mäuse, die eine optogenetische Stimulation von DA-Neuronen im Mittelhirn selbst auslösen können33, empfinden dies als belohnend32
    • THC und ein PPARγ-Agonist (nicht aber ein PPARα-Agonist) hemmten die Selbststimulation dosisabhängig32
    • Ein PPARγ-Agonist erhöhte die Lokomotion im offenen Feld (Zeichen von verringerter Angst), PPARα- oder PPARγ-Antagonisten verringerten diese32
  • Motivation
  • Stimmungsstörungen, Anhedonie, Depression (Details siehe unten)
  • Regulation von Peroxisomen34
  • Regulation der mitochondrialen β-Oxidation34
  • Thermogenese34
  • Lipoproteinstoffwechsel34
  • Energiehomöostase35
    • PPARα-Agonisten erhöhen den Glukosestoffwechsel34
  • PPARα-Agonisten bewirken Insulinsensibilisierung34
  • Neuroinflammation35
  • Proliferation/Differenzierung von Gliazellen35
  • antioxidative Reaktionen35
  • Neurogenese35
    • PPARα-Agonisten erhöhen BDNF und andere neurotrophe Faktoren36
  • Neurotransmission35
  • dopaminerge Aktivität in terminalen Regionen des VTA
    • akute oder chronische Stimulation von PPARα beeinflusst β2nAChRs in dopaminergen Neuronen im VTA3738
    • β2nAChR reguliert Feuerungsrate dopaminerger Neuronen im VTA39
    • chronische Gabe des synthetischen PPARα-Agonisten Fenofibrat40
      • verringert die Phosphorylierung von β2nAChRs
      • dadurch erhöhte phasische Feuerung von VTA-Dopamin-Neuronen
      • linderte depressive Symptome
      • stellte dopaminerge Reaktion auf relevante Reize im Nucleus accumbens wieder her
  • Orchestrierung und Modulation von Stressreaktionen41
    • mittels verstärkter Biosynthese von Neurosteroiden und Allopregnanolon/Pregnanolon42
  • geringere Nebenwirkungen als selektive PPARγ-Agonisten, die wegen Nebenwirkungen wie Gewichtszunahme, Herzinsuffizienz, Knochenbrüchen Makulaödemen und peripheren Ödemen nur eingeschränkt nutzbar sind43

2.2. Wodurch PPARα beeinflusst wird

PPARα wird beeinflusst durch:

  • Stress29
    • verschiedene chronische Stressprotokolle, die bei Nagetieren Depressionssymptome hervorrufen. (sozialer Niederlagen, unvermeidbarem Stress und sozialer Isolation) verringern die PPARα-Expression im Hippocampus signifikant, nicht jedoch in mPFC, Nucleus accumbens oder VTA
    • bewirkte epigenetische PPARα-Downregulation mit Hypermethylierung der Promotorregion
    • eine Einzeldosis des PPARα-Agonisten PEA bewirkte bei der sozial isolierten Maus, einem Tiermodell für langanhaltende stressinduzierte Depressionen und PTBS:42444546
      • Allopregnanolon erhöht in PFC, Amygdala, Hippocampus und Riechkolben
      • aggressives Verhalten abgeschwächt
      • Depressionssymptome verringert
      • Angstsymptome verringert
  • Methionin-arme Diät47

2.3. Beteiligung von PPARα an Störungsbildern

PPARα ist an verschiedenen Störungsbildern beteiligt:29

  • Depression4248
    • herabregulierte PPARα-Expression im Hippocampus erhöhte Depressionssymptome bei Mäusen36
    • PPARα-Überexpression im Hippocampus wirkte bei antidepressiv bei Mäusen3649
    • PPARα-Agonisten wirken antidepressiv29
      • PEA wirkt antidepressiv bei Mäusen50 und Ratten51
      • Fenofibrat wirkt antidepressiv40
        • auch via BDNF im Hippocampus52
      • Gemfibrozil wirkt antidepressiv53
      • Quercetin wirkt antidepressiv und östrogenähnlich54
    • Fluoxetin (SSRI) 36, Venlaflaxin (SNRI)55 und Reboxetin (NRI) 56 sind für ihre antidepressive Wirkung (auch) auf PPARα angewiesen
  • ASS
    • PPARα-Agonisten verbesserten autistische Symptome57
      • PEA bei Menschen58, bei Mäusen59 und Ratten60
      • Fenofibrat (selektiver Agonist)6162
    • ebenso verbesserten PPARγ-Agonisten autistische Symptome bei Mäusen:
      • Pioglitazon (selektiver Agonist)6364
      • Diosgenin (selektiver Agonist)65
    • PPARγ-Agonisten erwiesen sich als protektiv gegen ASS66
      • Pioglitazon67
    • autistische Verhaltensdefizite korrelieren im Tiermodell mit reduzierten PPARα-Expressionsniveaus in PFC und Hippocampus
      • repetitives Verhalten68
      • Verhaltensrigidität68
  • Huntington69
  • Multiple Sklerose70717273
  • Parkinson70
  • Alzheimer707475
  • Neuropathische Schmerzen70
  • PTSD
    • verringerte Haar- und Blutspiegel verschiedener PPARα-Agonisten76777843
  • ADHS: bisher keine positive Wirkung bekannt
    • Ein gemeinsamer Nenner aller neuropsychiatrischen Erkrankungen, einschließlich Schizophrenie und ADHS, ist eine verstärkte Entzündungsreaktion des Gehirns, die auf verschiedenen Wegen entstehen kann:79
      • Exposition gegenüber entzündungsfördernden Stoffen während der Entwicklung
      • Anhäufung von degenerierten Neuronen, oxidierten Proteinen, glykierten Produkten oder Lipidperoxidation im erwachsenen Gehirn
    • vor dem Hintergrund der entzündungshemmenden Wirkung von PPARα-Agonisten sowie der oben beschriebenen aktivierenden Wirkung auf phasisches Dopamin im VTA halten wir einen hilfreichen Beitrag von PPARα-Agonisten bei ADHS für nicht ausgeschlossen

2.4. Agonisten und Antagonisten von PPARα

Endogene Agonisten:

  • mehrfach ungesättigte Fettsäuren29
    • Arachidonsäure31
  • gesättigte Fettsäuren29
  • Eicosanoide29
    • 8-Hydroxyeicosatetraensäure80
  • Leukotriene29
  • oxidierte Fettsäuren29
  • oxidierte Phospholipide29
  • Polyphenole80
    • Resveratrol80
  • Fettsäureethanolamide29
    • Anandamid (AEA, Arachidonoylethanolamid82 (Partialagonist)83
    • Palmitoylethanolamid (PEA)84
      • Bindungsaffinität im nanomolaren Bereich (= niedriges Kd = hohe Bindung)29
    • OEA (Oleoylethanolamid)85
      • Bindungsaffinität im nanomolaren Bereich (= niedriges Kd = hohe Bindung)29
  • Oleamid ((Z)-octadec-9-enamid)86

Exogene Agonisten:

  • CBD
  • CBDA (Cannabidiolsäure)
    • PPAR-α- und PPAR-γ-Agonist87
  • (E)-CBG (Cannabigerol)
    • PPAR-α- und PPAR-γ-Agonist87
      Fibrate
    • Fenofibrat29
    • Gemfibrozil29
    • Bezafibrat31
    • Ciprofibrat80
  • GW764729
  • WY-1464329
  • synthetische Piperidin-Agonisten
    • CP-865529
    • CP-775146
    • CP-868388

Agonisten nach Bindungsstärke Kd in nanoMolar (nM) (niedriger Kd = hohe Bindung):81 Nanomolar = hohe Bindung, Mikromolar (mM) = niedrige Bindung.

  • Bezafibroyl-CoA-Thioester: 2,7 nM

  • Linolsäure: 4,8 nM

  • Ölsäure: 5,9 nM

  • Linolensäure: 7,9 nM

  • CP-868388: 10,8 nM (Ki)

  • Wy14643: 11,06 nM (Ki)i80

  • Bezafibrat: 13,1 nM

  • Arachidonsäure: 17,3 nM

  • CP-775146: 24,5 nM (Ki)

  • WY14643: 28,8 nM

  • Parinarinsäure: 30,0 nM

  • Leukotrien LTB4: 60,8 nM

  • CP-865529: 74 nM (Ki)

  • 8-Hydroxyeicosatetraensäure: 100 nM80

  • PEA (Palmitoylethanolamid): wohl nanomolar; Kd unbekannt, EC50-Wert: 3,1 ± 0,4 µM

  • OEA (Oleoylethanolamid): nanomolar

  • Stearinsäure: schwach

  • Fenofibrat 10-20 μM / mM80

3. GPR55

Agonist:

  • Palmitoylethanolamid (PEA)29

Antagonist:

  • CID1602004688

4. GPR119

GPR-119 wird vor allem in der Bauchspeicheldrüse und im Magen-Darm-Trakt exprimiert89
GPR-119 dient als glukoseabhängiger insulinotroper Rezeptor90
GPR-119 ist in den insulinproduzierenden Inselzellen der Bauchspeicheldrüse an Gαs gekoppelt90

Agonist:

  • OEA (Oleoylethanolamid)91

  1. Caterina MJ, Schumacher MA, Tominaga M, Rosen TA, Levine JD, Julius D (1997): The capsaicin receptor: a heat-activated ion channel in the pain pathway. Nature. 1997 Oct 23;389(6653):816-24. doi: 10.1038/39807. PMID: 9349813.

  2. Zheng J (2013): Molecular mechanism of TRP channels. Compr Physiol. 2013 Jan;3(1):221-42. doi: 10.1002/cphy.c120001. PMID: 23720286; PMCID: PMC3775668. REVIEW

  3. Geron M, Hazan A, Priel A (2017): Animal Toxins Providing Insights into TRPV1 Activation Mechanism. Toxins (Basel). 2017 Oct 16;9(10):326. doi: 10.3390/toxins9100326. PMID: 29035314; PMCID: PMC5666373. REVIEW

  4. Min JW, Liu WH, He XH, Peng BW (2013): Different types of toxins targeting TRPV1 in pain. Toxicon. 2013 Sep;71:66-75. doi: 10.1016/j.toxicon.2013.05.016. PMID: 23732125. REVIEW

  5. Schwarz (2015): Die Rolle des TRPV1-Rezeptors im Cerebellumcortex, Dissertation german

  6. Yao Z, Kamau PM, Han Y, Hu J, Luo A, Luo L, Zheng J, Tian Y, Lai R (2019): The Latoia consocia Caterpillar Induces Pain by Targeting Nociceptive Ion Channel TRPV1. Toxins (Basel). 2019 Nov 27;11(12):695. doi: 10.3390/toxins11120695. PMID: 31783580; PMCID: PMC6950366.

  7. Serra GP, Guillaumin A, Dumas S, Vlcek B, Wallén-Mackenzie Å. Midbrain Dopamine Neurons Defined by TrpV1 Modulate Psychomotor Behavior (2021): Front Neural Circuits. 2021 Nov 11;15:726893. doi: 10.3389/fncir.2021.726893. PMID: 34858142; PMCID: PMC8632262.

  8. Nagaoka K, Nagashima T, Asaoka N, Yamamoto H, Toda C, Kayanuma G, Siswanto S, Funahashi Y, Kuroda K, Kaibuchi K, Mori Y, Nagayasu K, Shirakawa H, Kaneko S (2021): Striatal TRPV1 activation by acetaminophen ameliorates dopamine D2 receptor antagonist-induced orofacial dyskinesia. JCI Insight. 2021 May 24;6(10):e145632. doi: 10.1172/jci.insight.145632. PMID: 33857021; PMCID: PMC8262333.

  9. Nam JH, Park ES, Won SY, Lee YA, Kim KI, Jeong JY, Baek JY, Cho EJ, Jin M, Chung YC, Lee BD, Kim SH, Kim EG, Byun K, Lee B, Woo DH, Lee CJ, Kim SR, Bok E, Kim YS, Ahn TB, Ko HW, Brahmachari S, Pletinkova O, Troconso JC, Dawson VL, Dawson TM, Jin BK (2015): TRPV1 on astrocytes rescues nigral dopamine neurons in Parkinson’s disease via CNTF. Brain. 2015 Dec;138(Pt 12):3610-22. doi: 10.1093/brain/awv297. PMID: 26490328; PMCID: PMC4840550.

  10. Rudd JA, Nalivaiko E, Matsuki N, Wan C, Andrews PL (2015): The involvement of TRPV1 in emesis and anti-emesis. Temperature (Austin). 2015 May 21;2(2):258-76. doi: 10.1080/23328940.2015.1043042. PMID: 27227028; PMCID: PMC4843889. REVIEW

  11. Mezey E, Tóth ZE, Cortright DN, Arzubi MK, Krause JE, Elde R, Guo A, Blumberg PM, Szallasi A (2000): Distribution of mRNA for vanilloid receptor subtype 1 (VR1), and VR1-like immunoreactivity, in the central nervous system of the rat and human. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 Mar 28;97(7):3655-60. doi: 10.1073/pnas.97.7.3655. PMID: 10725386; PMCID: PMC16295.

  12. Tóth A, Boczán J, Kedei N, Lizanecz E, Bagi Z, Papp Z, Edes I, Csiba L, Blumberg PM (2005): Expression and distribution of vanilloid receptor 1 (TRPV1) in the adult rat brain. Brain Res Mol Brain Res. 2005 Apr 27;135(1-2):162-8. doi: 10.1016/j.molbrainres.2004.12.003. PMID: 15857679.

  13. Micale V, Cristino L, Tamburella A, Petrosino S, Leggio GM, Drago F, Di Marzo V (2009): Anxiolytic effects in mice of a dual blocker of fatty acid amide hydrolase and transient receptor potential vanilloid type-1 channels. Neuropsychopharmacology. 2009 Feb;34(3):593-606. doi: 10.1038/npp.2008.98. PMID: 18580871.

  14. Coelho AA, Lima-Bastos S, Gobira PH, Lisboa SF (2023): Endocannabinoid signaling and epigenetics modifications in the neurobiology of stress-related disorders. Neuronal Signal. 2023 Jul 25;7(2):NS20220034. doi: 10.1042/NS20220034. PMID: 37520658; PMCID: PMC10372471. REVIEW

  15. Benítez-Angeles M, Morales-Lázaro SL, Juárez-González E, Rosenbaum T (2020): TRPV1: Structure, Endogenous Agonists, and Mechanisms. Int J Mol Sci. 2020 May 12;21(10):3421. doi: 10.3390/ijms21103421. PMID: 32408609; PMCID: PMC7279265. REVIEW

  16. Hwang SW, Cho H, Kwak J, Lee SY, Kang CJ, Jung J, Cho S, Min KH, Suh YG, Kim D, Oh U (2000): Direct activation of capsaicin receptors by products of lipoxygenases: endogenous capsaicin-like substances. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 May 23;97(11):6155-60. doi: 10.1073/pnas.97.11.6155. PMID: 10823958; PMCID: PMC18574.

  17. North KC, Chang J, Bukiya AN, Dopico AM (2018): Extra-endothelial TRPV1 channels participate in alcohol and caffeine actions on cerebral artery diameter. Alcohol. 2018 Dec;73:45-55. doi: 10.1016/j.alcohol.2018.04.002. PMID: 30268908; PMCID: PMC6417832.

  18. Morgese MG, Cassano T, Cuomo V, Giuffrida A (2007): Anti-dyskinetic effects of cannabinoids in a rat model of Parkinson’s disease: role of CB(1) and TRPV1 receptors. Exp Neurol. 2007 Nov;208(1):110-9. doi: 10.1016/j.expneurol.2007.07.021. PMID: 17900568; PMCID: PMC2128772.

  19. Hayase T (2011): Differential effects of TRPV1 receptor ligands against nicotine-induced depression-like behaviors. BMC Pharmacol. 2011 Jul 18;11:6. doi: 10.1186/1471-2210-11-6. PMID: 21767384; PMCID: PMC3155896.

  20. Fernández-Ruiz J, Hernández M, Ramos JA (2010): Cannabinoid-dopamine interaction in the pathophysiology and treatment of CNS disorders. CNS Neurosci Ther. 2010 Jun;16(3):e72-91. doi: 10.1111/j.1755-5949.2010.00144.x. PMID: 20406253; PMCID: PMC6493786. REVIEW

  21. Long W, Fatehi M, Soni S, Panigrahi R, Philippaert K, Yu Y, Kelly R, Boonen B, Barr A, Golec D, Campbell SA, Ondrusova K, Hubert M, Baldwin T, Lemieux MJ, Light PE (2020): Vitamin D is an endogenous partial agonist of the transient receptor potential vanilloid 1 channel. J Physiol. 2020 Oct;598(19):4321-4338. doi: 10.1113/JP279961. PMID: 32721035; PMCID: PMC7589233.

  22. Puthumana EA, Muhamad L, Young LA, Chu XP (2024): TRPA1, TRPV1, and Caffeine: Pain and Analgesia. Int J Mol Sci. 2024 Jul 19;25(14):7903. doi: 10.3390/ijms25147903. PMID: 39063144; PMCID: PMC11276833. REVIEW

  23. Nagatomo K, Kubo Y (2008): Caffeine activates mouse TRPA1 channels but suppresses human TRPA1 channels. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Nov 11;105(45):17373-8. doi: 10.1073/pnas.0809769105. PMID: 18988737; PMCID: PMC2582301.

  24. Mlost J, Wąsik A, Starowicz K (2019): Role of endocannabinoid system in dopamine signalling within the reward circuits affected by chronic pain. Pharmacol Res. 2019 May;143:40-47. doi: 10.1016/j.phrs.2019.02.029. PMID: 30831242. REVIEW

  25. Kumar U (2024): Cannabinoids: Role in Neurological Diseases and Psychiatric Disorders. Int J Mol Sci. 2024 Dec 27;26(1):152. doi: 10.3390/ijms26010152. PMID: 39796008; PMCID: PMC11720483. REVIEW

  26. Radwan MM, Chandra S, Gul S, ElSohly MA (2021): Cannabinoids, Phenolics, Terpenes and Alkaloids of Cannabis. Molecules. 2021 May 8;26(9):2774. doi: 10.3390/molecules26092774. PMID: 34066753; PMCID: PMC8125862. REVIEW

  27. Chakraborty S, Rebecchi M, Kaczocha M, Puopolo M (2016): Dopamine modulation of transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1) receptor in dorsal root ganglia neurons. J Physiol. 2016 Mar 15;594(6):1627-42. doi: 10.1113/JP271198. PMID: 26563747; PMCID: PMC4799965.

  28. Corrales P, Vidal-Puig A, Medina-Gómez G (2018): PPARs and Metabolic Disorders Associated with Challenged Adipose Tissue Plasticity. Int J Mol Sci. 2018 Jul 21;19(7):2124. doi: 10.3390/ijms19072124. PMID: 30037087; PMCID: PMC6073677. REVIEW

  29. Scheggi S, Pinna G, Braccagni G, De Montis MG, Gambarana C (2022): PPARα Signaling: A Candidate Target in Psychiatric Disorder Management. Biomolecules. 2022 May 20;12(5):723. doi: 10.3390/biom12050723. PMID: 35625650; PMCID: PMC9138493. REVIEW

  30. Warden A, Truitt J, Merriman M, Ponomareva O, Jameson K, Ferguson LB, Mayfield RD, Harris RA (2016): Localization of PPAR isotypes in the adult mouse and human brain. Sci Rep. 2016 Jun 10;6:27618. doi: 10.1038/srep27618. PMID: 27283430; PMCID: PMC4901333.

  31. Rankin L, Fowler CJ (2020): The Basal Pharmacology of Palmitoylethanolamide. Int J Mol Sci. 2020 Oct 26;21(21):7942. doi: 10.3390/ijms21217942. PMID: 33114698; PMCID: PMC7662788. REVIEW

  32. Hempel B, Crissman M, Pari S, Klein B, Bi GH, Alton H, Xi ZX (2023): PPARα and PPARγ are expressed in midbrain dopamine neurons and modulate dopamine- and cannabinoid-mediated behavior in mice. Mol Psychiatry. 2023 Oct;28(10):4203-4214. doi: 10.1038/s41380-023-02182-0. PMID: 37479780; PMCID: PMC10799974.

  33. Song R, Soler-Cedeño O, Xi ZX (2024): Optical Intracranial Self-Stimulation (oICSS): A New Behavioral Model for Studying Drug Reward and Aversion in Rodents. Int J Mol Sci. 2024 Mar 19;25(6):3455. doi: 10.3390/ijms25063455. PMID: 38542425; PMCID: PMC10970671. REVIEW

  34. Tyagi S, Gupta P, Saini AS, Kaushal C, Sharma S (2011): The peroxisome proliferator-activated receptor: A family of nuclear receptors role in various diseases. J Adv Pharm Technol Res. 2011 Oct;2(4):236-40. doi: 10.4103/2231-4040.90879. PMID: 22247890; PMCID: PMC3255347.

  35. Wójtowicz S, Strosznajder AK, Jeżyna M, Strosznajder JB (2020): The Novel Role of PPAR Alpha in the Brain: Promising Target in Therapy of Alzheimer’s Disease and Other Neurodegenerative Disorders. Neurochem Res. 2020 May;45(5):972-988. doi: 10.1007/s11064-020-02993-5. PMID: 32170673; PMCID: PMC7162839. REVIEW

  36. Song L, Wang H, Wang YJ, Wang JL, Zhu Q, Wu F, Zhang W, Jiang B (2018): Hippocampal PPARα is a novel therapeutic target for depression and mediates the antidepressant actions of fluoxetine in mice. Br J Pharmacol. 2018 Jul;175(14):2968-2987. doi: 10.1111/bph.14346. PMID: 29722018; PMCID: PMC6016645.

  37. Melis M, Carta S, Fattore L, Tolu S, Yasar S, Goldberg SR, Fratta W, Maskos U, Pistis M (2010): Peroxisome proliferator-activated receptors-alpha modulate dopamine cell activity through nicotinic receptors. Biol Psychiatry. 2010 Aug 1;68(3):256-64. doi: 10.1016/j.biopsych.2010.04.016. PMID: 20570248; PMCID: PMC2907468.

  38. Melis M, Scheggi S, Carta G, Madeddu C, Lecca S, Luchicchi A, Cadeddu F, Frau R, Fattore L, Fadda P, Ennas MG, Castelli MP, Fratta W, Schilstrom B, Banni S, De Montis MG, Pistis M (2013): PPARα regulates cholinergic-driven activity of midbrain dopamine neurons via a novel mechanism involving α7 nicotinic acetylcholine receptors. J Neurosci. 2013 Apr 3;33(14):6203-11. doi: 10.1523/JNEUROSCI.4647-12.2013. PMID: 23554501; PMCID: PMC6618938.

  39. Mameli-Engvall M, Evrard A, Pons S, Maskos U, Svensson TH, Changeux JP, Faure P (2006): Hierarchical control of dopamine neuron-firing patterns by nicotinic receptors. Neuron. 2006 Jun 15;50(6):911-21. doi: 10.1016/j.neuron.2006.05.007. PMID: 16772172.

  40. Scheggi S, Melis M, De Felice M, Aroni S, Muntoni AL, Pelliccia T, Gambarana C, De Montis MG, Pistis M (2016): PPARα modulation of mesolimbic dopamine transmission rescues depression-related behaviors. Neuropharmacology. 2016 Nov;110(Pt A):251-259. doi: 10.1016/j.neuropharm.2016.07.024. PMID: 27457507.

  41. Nisbett KE, Pinna G (2018): Emerging Therapeutic Role of PPAR-α in Cognition and Emotions. Front Pharmacol. 2018 Oct 2;9:998. doi: 10.3389/fphar.2018.00998. PMID: 30356872; PMCID: PMC6190882.

  42. Locci A, Pinna G (2019): Stimulation of Peroxisome Proliferator-Activated Receptor-α by N-Palmitoylethanolamine Engages Allopregnanolone Biosynthesis to Modulate Emotional Behavior. Biol Psychiatry. 2019 Jun 15;85(12):1036-1045. doi: 10.1016/j.biopsych.2019.02.006. PMID: 30955840.

  43. Tufano M, Pinna G (2020): Is There a Future for PPARs in the Treatment of Neuropsychiatric Disorders? Molecules. 2020 Feb 27;25(5):1062. doi: 10.3390/molecules25051062. PMID: 32120979; PMCID: PMC7179196. REVIEW

  44. Locci A, Geoffroy P, Miesch M, Mensah-Nyagan AG, Pinna G (2017): Social Isolation in Early versus Late Adolescent Mice Is Associated with Persistent Behavioral Deficits That Can Be Improved by Neurosteroid-Based Treatment. Front Cell Neurosci. 2017 Aug 29;11:208. doi: 10.3389/fncel.2017.00208. PMID: 28900387; PMCID: PMC5581875.

  45. Pinna G (2010): In a mouse model relevant for post-traumatic stress disorder, selective brain steroidogenic stimulants (SBSS) improve behavioral deficits by normalizing allopregnanolone biosynthesis. Behav Pharmacol. 2010 Sep;21(5-6):438-50. doi: 10.1097/FBP.0b013e32833d8ba0. PMID: 20716970; PMCID: PMC2942072. REVIEW

  46. Matrisciano F, Pinna G (2021): PPAR-α Hypermethylation in the Hippocampus of Mice Exposed to Social Isolation Stress Is Associated with Enhanced Neuroinflammation and Aggressive Behavior. Int J Mol Sci. 2021 Oct 1;22(19):10678. doi: 10.3390/ijms221910678. PMID: 34639019; PMCID: PMC8509148.

  47. Zhang Y, Liu T, Pan F, Li Y, Wang D, Pang J, Sang H, Xi Y, Shi L, Liu Z (2025): Dietary Methionine Restriction Alleviates Cognitive Impairment in Alzheimer’s Disease Mice via Sex-Dependent Modulation on Gut Microbiota and Tryptophan Metabolism: A Multiomics Analysis. J Agric Food Chem. 2025 Jan 15;73(2):1356-1372. doi: 10.1021/acs.jafc.4c09878. PMID: 39745486.

  48. De Gregorio D, Manchia M, Carpiniello B, Valtorta F, Nobile M, Gobbi G, Comai S (2019): Role of palmitoylethanolamide (PEA) in depression: Translational evidence: Special Section on “Translational and Neuroscience Studies in Affective Disorders”. Section Editor, Maria Nobile MD, PhD. This Section of JAD focuses on the relevance of translational and neuroscience studies in providing a better understanding of the neural basis of affective disorders. The main aim is to briefly summaries relevant research findings in clinical neuroscience with particular regards to specific innovative topics in mood and anxiety disorders. J Affect Disord. 2019 Aug 1;255:S0165-0327(18)31599-4. doi: 10.1016/j.jad.2018.10.117. PMID: 30391203. REVIEW

  49. Niu QQ, Xi YT, Zhang CR, Li XY, Li CZ, Wang HD, Li P, Yin YL (2024): Potential mechanism of perillaldehyde in the treatment of nonalcoholic fatty liver disease based on network pharmacology and molecular docking. Eur J Pharmacol. 2024 Dec 15;985:177092. doi: 10.1016/j.ejphar.2024.177092. PMID: 39510336.

  50. Zhang L, Tang W, Ouyang Y, Zhang M, Li R, Sun L, Liu C, Yu H (2023): N-palmitoylethanolamine modulates hippocampal neuroplasticity in rats with stress-induced depressive behavior phenotype. Eur J Pharmacol. 2023 Oct 15;957:176041. doi: 10.1016/j.ejphar.2023.176041. PMID: 37673363.

  51. Li M, Wang D, Bi W, Jiang ZE, Piao R, Yu H (2019): N-Palmitoylethanolamide Exerts Antidepressant-Like Effects in Rats: Involvement of PPARα Pathway in the Hippocampus. J Pharmacol Exp Ther. 2019 Apr;369(1):163-172. doi: 10.1124/jpet.118.254524. PMID: 30635472.

  52. Jiang B, Wang YJ, Wang H, Song L, Huang C, Zhu Q, Wu F, Zhang W (2017): Antidepressant-like effects of fenofibrate in mice via the hippocampal brain-derived neurotrophic factor signalling pathway. Br J Pharmacol. 2017 Jan;174(2):177-194. doi: 10.1111/bph.13668. PMID: 27861729; PMCID: PMC5192965.

  53. Ni YF, Wang H, Gu QY, Wang FY, Wang YJ, Wang JL, Jiang B (2018): Gemfibrozil has antidepressant effects in mice: Involvement of the hippocampal brain-derived neurotrophic factor system. J Psychopharmacol. 2018 Apr;32(4):469-481. doi: 10.1177/0269881118762072. PMID: 29534628.

  54. Yao R, Cui W, Wang W, Feng C, Chen Y, Zhao X (2025): Metabolomics revealed that quercetin improved spleen metabolism disorders and regulated the brain-spleen axis in perimenopausal depression model rats. J Pharm Biomed Anal. 2025 Jun 15;258:116744. doi: 10.1016/j.jpba.2025.116744. PMID: 39965276.

  55. Chen C, Shen JH, Xu H, Chen P, Chen F, Guan YX, Jiang B, Wu ZH (2019): Hippocampal PPARα is involved in the antidepressant-like effects of venlafaxine in mice. Brain Res Bull. 2019 Nov;153:171-180. doi: 10.1016/j.brainresbull.2019.08.016. PMID: 31445056.

  56. Gao S, Zhang X, Xu H, Miao D, Qian J, Wu Z, Shi W (2022): Promoting the hippocampal PPARα expression participates in the antidepressant mechanism of reboxetine, a selective norepinephrine reuptake inhibitor. Behav Brain Res. 2022 Jan 7;416:113535. doi: 10.1016/j.bbr.2021.113535. PMID: 34416301.

  57. Elnahas EM, Abuelezz SA, Mohamad MI, Nabil MM, Abdelraouf SM, Bahaa N, Hassan GAM, Aboul-Fotouh S (2022): Novel role of peroxisome proliferator activated receptor-α in valproic acid rat model of autism: Mechanistic study of risperidone and metformin monotherapy versus combination. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2022 Jun 8;116:110522. doi: 10.1016/j.pnpbp.2022.110522. PMID: 35131336.

  58. Colizzi M, Bortoletto R, Costa R, Zoccante L (2021): Palmitoylethanolamide and Its Biobehavioral Correlates in Autism Spectrum Disorder: A Systematic Review of Human and Animal Evidence. Nutrients. 2021 Apr 18;13(4):1346. doi: 10.3390/nu13041346. PMID: 33919499; PMCID: PMC8073263.

  59. Cristiano C, Pirozzi C, Coretti L, Cavaliere G, Lama A, Russo R, Lembo F, Mollica MP, Meli R, Calignano A, Mattace Raso G (2018): Palmitoylethanolamide counteracts autistic-like behaviours in BTBR T+tf/J mice: Contribution of central and peripheral mechanisms. Brain Behav Immun. 2018 Nov;74:166-175. doi: 10.1016/j.bbi.2018.09.003. PMID: 30193877.

  60. Mirza R, Sharma B (2018): Selective modulator of peroxisome proliferator-activated receptor-α protects propionic acid induced autism-like phenotypes in rats. Life Sci. 2018 Dec 1;214:106-117. doi: 10.1016/j.lfs.2018.10.045. PMID: 30366038.

  61. Mirza R, Sharma B (2019): Benefits of Fenofibrate in prenatal valproic acid-induced autism spectrum disorder related phenotype in rats. Brain Res Bull. 2019 Apr;147:36-46. doi: 10.1016/j.brainresbull.2019.02.003. PMID: 30769127.

  62. Scheggi S, Guzzi F, Braccagni G, De Montis MG, Parenti M, Gambarana C (2020): Targeting PPARα in the rat valproic acid model of autism: focus on social motivational impairment and sex-related differences. Mol Autism. 2020 Jul 27;11(1):62. doi: 10.1186/s13229-020-00358-x. PMID: 32718349; PMCID: PMC7385875.

  63. Mirza R, Sharma B (2019): Beneficial effects of pioglitazone, a selective peroxisome proliferator-activated receptor-γ agonist in prenatal valproic acid-induced behavioral and biochemical autistic like features in Wistar rats. Int J Dev Neurosci. 2019 Aug;76:6-16. doi: 10.1016/j.ijdevneu.2019.05.006. PMID: 31128204.

  64. Mirza R, Sharma B (2019): A selective peroxisome proliferator-activated receptor-γ agonist benefited propionic acid induced autism-like behavioral phenotypes in rats by attenuation of neuroinflammation and oxidative stress. Chem Biol Interact. 2019 Sep 25;311:108758. doi: 10.1016/j.cbi.2019.108758. PMID: 31348919.

  65. Reza Naghdi M, Ahadi R, Motamed Nezhad A, Sadat Ahmadi Tabatabaei F, Soleimani M, Hajisoltani R (2024): The neuroprotective effect of Diosgenin in the rat Valproic acid model of autism. Brain Res. 2024 Sep 1;1838:148963. doi: 10.1016/j.brainres.2024.148963. PMID: 38705555.

  66. Khera R, Mehan S, Kumar S, Sethi P, Bhalla S, Prajapati A (2022): Role of JAK-STAT and PPAR-Gamma Signalling Modulators in the Prevention of Autism and Neurological Dysfunctions. Mol Neurobiol. 2022 Jun;59(6):3888-3912. doi: 10.1007/s12035-022-02819-1. PMID: 35437700. REVIEW

  67. Sandhu A, Rawat K, Gautam V, Kumar A, Sharma A, Bhatia A, Grover S, Saini L, Saha L (2024): Neuroprotective effect of PPAR gamma agonist in rat model of autism spectrum disorder: Role of Wnt/β-catenin pathway. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2024 Dec 20;135:111126. doi: 10.1016/j.pnpbp.2024.111126. PMID: 39179196.

  68. D’Agostino G, Cristiano C, Lyons DJ, Citraro R, Russo E, Avagliano C, Russo R, Raso GM, Meli R, De Sarro G, Heisler LK, Calignano A (2015): Peroxisome proliferator-activated receptor alpha plays a crucial role in behavioral repetition and cognitive flexibility in mice. Mol Metab. 2015 May 2;4(7):528-36. doi: 10.1016/j.molmet.2015.04.005. PMID: 26137440; PMCID: PMC4481424.

  69. Bhateja DK, Dhull DK, Gill A, Sidhu A, Sharma S, Reddy BV, Padi SS (2012): Peroxisome proliferator-activated receptor-α activation attenuates 3-nitropropionic acid induced behavioral and biochemical alterations in rats: possible neuroprotective mechanisms. Eur J Pharmacol. 2012 Jan 5;674(1):33-43. doi: 10.1016/j.ejphar.2011.10.029. PMID: 22056833.

  70. Das A, Balakrishnan P (2025): Mechanisms and clinical applications of palmitoylethanolamide (PEA) in the treatment of neuropathic pain. Inflammopharmacology. 2025 Jan;33(1):121-133. doi: 10.1007/s10787-024-01623-8. PMID: 39714723. REVIEW

  71. Abulaban AA, Al-Kuraishy HM, Al-Gareeb AI, Elekhnawy E, Alanazi A, Alexiou A, Papadakis M, Batiha GE (2024): Role of fenofibrate in multiple sclerosis. Eur J Med Res. 2024 Feb 9;29(1):113. doi: 10.1186/s40001-024-01700-2. PMID: 38336772; PMCID: PMC10854163. REVIEW

  72. Titus C, Hoque MT, Bendayan R (2024): PPAR agonists for the treatment of neuroinflammatory diseases. Trends Pharmacol Sci. 2024 Jan;45(1):9-23. doi: 10.1016/j.tips.2023.11.004. PMID: 38065777. REVIEW

  73. Valenza M, Facchinetti R, Steardo L, Scuderi C (2022): Palmitoylethanolamide and White Matter Lesions: Evidence for Therapeutic Implications. Biomolecules. 2022 Aug 27;12(9):1191. doi: 10.3390/biom12091191. PMID: 36139030; PMCID: PMC9496237. REVIEW

  74. Beggiato S, Tomasini MC, Cassano T, Ferraro L (2020): Chronic Oral Palmitoylethanolamide Administration Rescues Cognitive Deficit and Reduces Neuroinflammation, Oxidative Stress, and Glutamate Levels in A Transgenic Murine Model of Alzheimer’s Disease. J Clin Med. 2020 Feb 5;9(2):428. doi: 10.3390/jcm9020428. PMID: 32033363; PMCID: PMC7074257.

  75. Sáez-Orellana F, Octave JN, Pierrot N (2020): Alzheimer’s Disease, a Lipid Story: Involvement of Peroxisome Proliferator-Activated Receptor α. Cells. 2020 May 14;9(5):1215. doi: 10.3390/cells9051215. PMID: 32422896; PMCID: PMC7290654. REVIEW

  76. Wilker S, Pfeiffer A, Elbert T, Ovuga E, Karabatsiakis A, Krumbholz A, Thieme D, Schelling G, Kolassa IT (2016): Endocannabinoid concentrations in hair are associated with PTSD symptom severity. Psychoneuroendocrinology. 2016 May;67:198-206. doi: 10.1016/j.psyneuen.2016.02.010. PMID: 26923850.

  77. Aspesi D, Pinna G (2018): Could a blood test for PTSD and depression be on the horizon? Expert Rev Proteomics. 2018 Dec;15(12):983-1006. doi: 10.1080/14789450.2018.1544894. PMID: 30394136. REVIEW

  78. Pinna G (2018): Biomarkers for PTSD at the Interface of the Endocannabinoid and Neurosteroid Axis. Front Neurosci. 2018 Aug 6;12:482. doi: 10.3389/fnins.2018.00482. PMID: 30131663; PMCID: PMC6091574.

  79. Popa-Wagner A, Mitran S, Sivanesan S, Chang E, Buga AM (2013): ROS and brain diseases: the good, the bad, and the ugly. Oxid Med Cell Longev. 2013;2013:963520. doi: 10.1155/2013/963520. PMID: 24381719; PMCID: PMC3871919. REVIEW

  80. Contreras AV, Torres N, Tovar AR (2013): PPAR-α as a key nutritional and environmental sensor for metabolic adaptation. Adv Nutr. 2013 Jul 1;4(4):439-52. doi: 10.3945/an.113.003798. PMID: 23858092; PMCID: PMC3941823. REVIEW

  81. Lin Q, Ruuska SE, Shaw NS, Dong D, Noy N (1999): Ligand selectivity of the peroxisome proliferator-activated receptor alpha. Biochemistry. 1999 Jan 5;38(1):185-90. doi: 10.1021/bi9816094. PMID: 9890897.

  82. Scheggi S, Pinna G, Braccagni G, De Montis MG, Gambarana C (2022): PPARα Signaling: A Candidate Target in Psychiatric Disorder Management. Biomolecules. 2022 May 20;12(5):723. doi: 10.3390/biom12050723. PMID: 35625650; PMCID: PMC9138493. REVIEW}}): Vollagonist, schwache Bindung{{Centonze D, Battistini L, Maccarrone M (2008): The endocannabinoid system in peripheral lymphocytes as a mirror of neuroinflammatory diseases. Curr Pharm Des. 2008;14(23):2370-42. doi: 10.2174/138161208785740018. PMID: 18781987. REVIEW

  83. Covey DP, Yocky AG (2021): Endocannabinoid Modulation of Nucleus Accumbens Microcircuitry and Terminal Dopamine Release. Front Synaptic Neurosci. 2021 Aug 23;13:734975. doi: 10.3389/fnsyn.2021.734975. PMID: 34497503; PMCID: PMC8419321. REVIEW

  84. Ambrosino P, Soldovieri MV, Russo C, Taglialatela M (2013): Activation and desensitization of TRPV1 channels in sensory neurons by the PPARα agonist palmitoylethanolamide. Br J Pharmacol. 2013 Mar;168(6):1430-44. doi: 10.1111/bph.12029. PMID: 23083124; PMCID: PMC3596648.

  85. Blanco E, Galeano P, Holubiec MI, Romero JI, Logica T, Rivera P, Pavón FJ, Suarez J, Capani F, Rodríguez de Fonseca F (2015): Perinatal asphyxia results in altered expression of the hippocampal acylethanolamide/endocannabinoid signaling system associated to memory impairments in postweaned rats. Front Neuroanat. 2015 Nov 3;9:141. doi: 10.3389/fnana.2015.00141. PMID: 26578900; PMCID: PMC4630311.

  86. Kruk-Slomka M, Dzik A, Budzynska B, Biala G (2017): Endocannabinoid System: the Direct and Indirect Involvement in the Memory and Learning Processes-a Short Review. Mol Neurobiol. 2017 Dec;54(10):8332-8347. doi: 10.1007/s12035-016-0313-5. PMID: 27924524; PMCID: PMC5684264. REVIEW

  87. D’Aniello E, Fellous T, Iannotti FA, Gentile A, Allarà M, Balestrieri F, Gray R, Amodeo P, Vitale RM, Di Marzo V (2019): Identification and characterization of phytocannabinoids as novel dual PPARα/γ agonists by a computational and in vitro experimental approach. Biochim Biophys Acta Gen Subj. 2019 Mar;1863(3):586-597. doi: 10.1016/j.bbagen.2019.01.002. PMID: 30611848.

  88. Galaj E, Bi GH, Yang HJ, Xi ZX (2020): Cannabidiol attenuates the rewarding effects of cocaine in rats by CB2, 5-HT1A and TRPV1 receptor mechanisms. Neuropharmacology. 2020 May 1;167:107740. doi: 10.1016/j.neuropharm.2019.107740. PMID: 31437433; PMCID: PMC7493134.

  89. Fredriksson R, Höglund PJ, Gloriam DE, Lagerström MC, Schiöth HB (2003): Seven evolutionarily conserved human rhodopsin G protein-coupled receptors lacking close relatives. FEBS Lett. 2003 Nov 20;554(3):381-8. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01196-7. PMID: 14623098.

  90. Chu ZL, Carroll C, Alfonso J, Gutierrez V, He H, Lucman A, Pedraza M, Mondala H, Gao H, Bagnol D, Chen R, Jones RM, Behan DP, Leonard J (2008): A role for intestinal endocrine cell-expressed g protein-coupled receptor 119 in glycemic control by enhancing glucagon-like Peptide-1 and glucose-dependent insulinotropic Peptide release. Endocrinology. 2008 May;149(5):2038-47. doi: 10.1210/en.2007-0966. PMID: 18202141.

  91. Overton HA, Babbs AJ, Doel SM, Fyfe MC, Gardner LS, Griffin G, Jackson HC, Procter MJ, Rasamison CM, Tang-Christensen M, Widdowson PS, Williams GM, Reynet C (2006): Deorphanization of a G protein-coupled receptor for oleoylethanolamide and its use in the discovery of small-molecule hypophagic agents. Cell Metab. 2006 Mar;3(3):167-75. doi: 10.1016/j.cmet.2006.02.004. PMID: 16517404.

Diese Seite wurde am 24.03.2025 zuletzt aktualisiert.