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Das Immunsystem

Inhaltsverzeichnis

Das Immunsystem

Das Immunsystem besteht aus verschiedenen Elementen: Dem zellulären und dem humoralen Immunsystem, dem Komplementsystem, der angeborenen unspezifischen Immunantwort und der adaptiven spezifischen (früher: erworbenen) Immunantwort.
Das zelluläre Immunsystem besteht aus Zellen wie Makrophagen, dendritischen Zellen und natürlichen Killerzellen, während das humorale Immunsystem aus nicht-zellulären Bestandteilen von Körperflüssigkeiten besteht.
Das Komplementsystem besteht aus Proteinen im Blut, die bei der Bekämpfung von Pathogenen helfen.
Die angeborene Immunantwort ist schnell und unspezifisch und wird von Zellen wie Makrophagen und natürlichen Killerzellen vermittelt.
Die erworbene Immunantwort ist spezifisch und wird von B- und T-Lymphozyten vermittelt.

Glucocorticoide können die Immunantwort beeinflussen, indem sie die Produktion von Zytokinen modulieren. Auf diese Weise kann starker oder lang anhaltender Stress zu einem Ungleichgewicht der Immunantwort führen und die Anfälligkeit für bestimmte Erkrankungen erhöhen. Es wird auch vermutet, dass Glucocorticoide Einfluss auf den TH1-/TH2-Shift haben, der für die Balance zwischen Entzündungsreaktionen und Immunabwehr wichtig ist.
Eine hohe oder niedrige Cortisolstressantwort kann sich unterschiedlich auf die Zytokinreaktionen im Körper auswirken. Eine höhere Cortisolstressantwort wurde mit einer geringeren Zytokinreaktion in einigen Fällen und einer höheren in anderen Fällen in Verbindung gebracht.

1. Das Immunsystem

Die nachfolgende Kurzdarstellung des Immunsystems basiert im Wesentlichen auf Wolf.1

Das Immunsystem besteht aus mehreren verschiedenen Elementen, die sich gegenseitig ergänzen und überlappen, so wie die Stresssysteme die in Bezug auf Stress tun.

1.1. Zelluläre / Humorale Immunantwort

Die zelluläre Immunantwort ist der durch zytotoxische Zellen vermittelte Teil der Immunantwort des adaptiven Immunsystems. Hierzu zählen u.a. Makrophagen, Granulozyten, dendritische Zellen und natürliche Killerzellen.
Das zelluläre Immunsystem vermittelt vornehmlich TH-1-Immunantworten, das bei akuten Entzündungen aktiv ist.2

Die humorale Immunantwort (humor = Feuchtigkeit, Saft, Flüssigkeit) ist die durch nicht-zellulären Bestandteile von Körperflüssigkeiten vermittelte Immunantwort. Hierzu zählen u.a. Zytokine, Chemokine und das Komplementsystem.
Das humorale Immunsystem vermittelt vornehmlich TH-2-Immunantworten, das bei chronischen Entzündungen und Allergien aktiv ist.2

1.2. Komplementsystem

Das Komplementsystem besteht aus rund 30 Glycoproteinen, die sich im Blut befinden. Bindet eines davon an ein Pathogen, entsteht eine Kaskade von Enzymreaktionen, durch die sich die Proteine gegenseitig aktivieren, was zur Bekämpfung des Pathogens beitragen kann.3

Das Komplementsystem besteht aus Plasmaproteinen und proteolyischen Enzymen und kann mittels Lyse, Opsonierung oder lokalen Entzündungsreaktionen Bakterien und Viren inaktivieren und zerstören.

Positivregulatoren:

  • C1 bis C9
  • Mannose-bindendes Lektin (MBL)
  • Serinproteasen C1r, C1s, MASP-1 bis 3

Aus Teilen von C1 bis C5 und (mittels Protease-vermittelter Spaltung) und Zusammenlagerungen mit C6 bis C9 entstehen viele weitere Proteine und Proteinkomplexe, z.B.:

  • C3a
  • C5a
  • C4a
  • Membranangriffskomplex

Negativregulatoren:

  • C1-Inhibitor
  • Faktor H
  • Faktor I
  • C4bp
  • CD35
  • CD46
  • CD55
  • CD59
  • Vitronektin

Aktivatoren:

  • Properdin
  • Cobra Venom Factor.

1.3. Angeborene Immunantwort

Die angeborene Immunantwort (Makrophagen, dendritische Zellen, natürliche Killerzellen, neutrophile, basophile und eosinophile Granulozyten) ist schnell und unspezifisch.
Makrophagen erkennen Pathogene anhand der Proteine auf deren Oberfläche und zersetzen sie mittels Phagozytose. Danach präsentieren die Makrophagen auf ihrer Oberfläche die dabei entstandenen Antigene, was Zellen der erworbenen Immunabwehr aktiviert. Die aktivierte Makrophagen setzen Zytokine frei. Zytokine sind chemische Botenstoffe, die lokale Entzündungsreaktionen auslösen.
Dendritischen Zellen repräsentieren wie die Makrophagen Antigene und vermitteln über aktivierte B- und T-Lymphozyten zwischen angeborener und erworbener Immunabwehr.
Natürliche Killerzellen (NK) können mit Viren infizierte oder entartete Zellen erkennen. NK werden mittels eines komplexen Rezeptorsystems aktiviert und bewirken durch Ausschüttung verschiedener Zytotoxine die Apoptose (den Zelltod) der Zielzelle.

1.4. Adaptive (spezifische, erworbene) Immunantwort

Die adaptive Immunantwort (B- und T-Lymphozyten und die daraus entstehenden TH-Zellen) ist zwar langsamer, aber wirkungsvoller. Die adaptive Immunantwort speichert über antigen-spezifische Effektorzellen und Gedächtniszellen einmal erfolgreich gebildete Immunantworten ab, sodass diese bei erneutem Bedarf schneller abgerufen werden können. Dieses Prinzip nutzt die Impfung.

B-Lymphozyten (bone) entstehen aus hämatopoetischen Stammzellen des Knochenmarks. Sie entwickeln sich zu Gedächtniszellen oder Antikörper produzierenden Plasmazellen. Sie bilden (mit oder ohne Kontakt zu T-Helferzellen (Th-Zellen) antigen-spezifische Antikörper (= Immunglobuline, Ig).
Regulatorische B-Zellen unterdrücken das Immunsystem.

T-Lymphozyten entstehen in der fetalen Leber und im Knochenmark und wandern mit dem Blut in den Thymus, wo sie ausreifen. Durch Rekombination von Gensegmenten bilden sie spezifische Rezeptoren für verschiedene Antigene.
Lymphozyten produzieren auf ihrer Oberfläche zelluläre Glykoproteine, die „clusters of differentiation“. Je nach Art dieser Glykoproteine entwickeln sich T-Lymphozyten zu verschiedenen Arten von T-Helferzellen (Th-Zellen).
Die reifen (noch antigen-naiven = noch nicht auf bestimmte Antigene spezialisierten) TH-Zellen wandern aus dem Thymus in die lymphatischen Gewebe (Lymphfollikel, Lymphknoten, Milz) wo ihnen durch B-Lymphozyten, dendritische Zellen oder Makrophagen Antigene präsentiert werden, wodurch sie sich auf diese Antigene spezialisieren (Differenzierung).

1.5. Oberflächenmarker

Die Zellen des Immunsystems unterscheiden sich nach Oberflächenmarkern:4

  • CD4+: TH-1 (T-Inducer-Zellen)
  • CD8+: TH-2 (T-Suppressorzellen)
  • CD14+: Monozyten, Makrophagen
  • CD16+, CD56+: NK-Zellen
  • CD5+, CD19+: B-Lymphozyten
  • CD3+: T-Lymphozyten
  • CD45+: T-Gedächtniszellen

1.6. Rezeptorklassen

Um körpereigene Zellen vor der Immunreaktion zu schützen, verwenden die antigenpräsentierenden Zellen unterschiedliche Rezeptorklassen zur Antigenpräsentation für die TH-Zellen. Es gibt 3 Rezeptorklassen: CD4+-TH-Zellen binden nur an von MHC-II präsentierte Antigene, CD8+-TZH-Zellen nur an von MHC I präsentierte Antigene. Zu den MHC III-Komplexen gehören die Komplementfaktoren C2, C4 und Bf, sowie verschiedene Zytokine, z.B. der Tumornekrosefaktor (TNF). MHC III sind Plasmaproteine, die an der unspezifischen Immunabwehr beteiligt sind.

1.7. T-Helfer-Zellen (TH-Zellen)

TH-0-Zellen sind TH-Zellen, die noch keinen Antigenkontakt hatten. Je nach Art des Antigens, das ihnen von den Antigenpräsentierenden Zellen präsentiert wird, entwickeln sie sich (vornehmlich) zu TH-1 oder TH-2-Zellen.

TH-1-Zellen werden bei akuten Entzündungen aktiviert42 und schütten Zytokine wie IFN-γ, IL-2 und TNF-α aus, wodurch Makrophagen aktiviert und differenziert werden. Makrophagen (und dendritische Zellen) schütten IL-12 aus, das wiederum fördert, das sich aus den naiven TH-0-Zellen TH-1-Zellen bilden.
IL-12 und IFN-γ hemmen die TH-2-Zellausbildung.

TH-2-CD4-positive Zellen werden bei chronischen Entzündungen und allergischen Reaktionen aktiviert42 und interagieren mittels Zytokinen und zellständigen Molekülen mit B-Lymphozyten. Die B-Lymphozyten produzieren dadurch Antikörper.
Typ2-CD4-positive Zellen fördern dadurch die Produktion von IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-13 und Lymphotoxin-α.
IL-4 und IL-10 hemmen die Makrophagen-Aktivierung und damit die TH-1-Zellausbildung.

TH-1-Zellen und TH-2-Zellen hemmen sich also gegenseitig.
Das Immunsystem steht normalerweise in einem funktionellen Gleichgewicht zwischen einer TH-1- und einer TH-2-Betonung.42 Cortisol hemmt TH-1 und fördert TH-2, während Wachstumshormon entgegengesetzt TH-2 fördert und TH-1 hemmt. Cortisol und Wachstumshormon unterliegen einem versetzten Tagesrhythmus und dürften auf diese Weise den regelmäßigen TH-1/TH-2-Wechsel modulieren. Schütten die Stresssysteme dauerhaft zu viel oder zu wenig Cortisol aus, verursacht diese Stressschieflage Störungen des Immunsystems.15

TH-17-Zellen entwickeln sich aus T-Helferzellen nach deren Aktivierung durch Antigenkontakt mittels IL-6 und TGF-β. TH-17-Zellen benötigen IL-23 um zu überleben. IL-23 ist an der Entstehung von Autoimmunerkrankungen beteiligt.
TH17-Zellen produzieren IL-17A bis IL17F, TNF-α und IL-6 und hemmen TH-1-Zellen.

Die natürlichen regulatorischen T-Zellen (nTreg) stellen bis zu 10 % der peripheren CD4-positiven T-Lymphozyten. Sie haben ausgeprägte immunmodulierende Eigenschaften und unterstützen die Aufrechterhaltung der Selbsttoleranz, indem sie überschießende Angriffe auf intakte Körperzellen begrenzen. Sie hemmen dendritische Zellen, natürliche Killerzellen, CD4+, CD8+-Zellen und B-Lymphozyten. Sie sind bei verschiedenen Autoimmunerkrankungen involviert.
nTreg fördern die Produktion von CD25.

IL-12 – zusammen mit IL-18 – verstärken die Produktion von IFN-γ durch natürliche Killerzellen (NK). IL-12 zusammen mit IL-18, IFN-α und IFN-γ fördern die Differenzierung von naiven TH-Zellen zu TH-1-Zellen.5

Stress und Glucocorticoide haben unmittelbare gegenseitige Auswirkungen auf das Immunsystem. Stress beeinflusst bestimmte Zytokine, Zytokine beeinflussen Glucocorticoide und Glucocorticoide beeinflussen Zytokine.

2. Stress und das Immunsystem

2.1. Zytokinreaktionen und Cortisolstressantwort bei Gesunden

Eine Studie fand, dass auf milden Stress Gesunde mit einer niedrigen Cortisolstressantwort höhere Stressantworten von IL-6 und IL-1ra im Blut zeigten als diejenigen mit einer hohen Cortisolstressantwort. Zugleich zeigten die Probanden mit einer niedrigen Cortisolstressantwort eine geringere Herzfrequenzvariabilität, was auf eine schlechtere Stressverarbeitung durch das vegetative Nervensystem hindeutet.6 Dies korreliert mit den Ergebnissen einer anderen Studie an Gesunden, wonach eine niedrigere Cortisolstressantwort mit einer verlängerten IL-6-Stressantwort korrelierte.7 Eine weitere Studie an Gesunden fand dagegen eine Tendenz, dass eine erhöhte IL-6-Stressantwort mit einer erhöhten Cortisolstressantwort einhergehe.3

2.2. Zytokinreaktionen und Cortisolstressantwort bei psychischen Störungen

Eine kleinere Studie an Depressiven fand eine positive Korrelation zwischen IL-6-Stressantwort und Cortisolstressantwort und bei Gesunden keinen Zusammenhang.8
Bei Fatigue wurde auf Stress eine Verringerung von IL-6 und TNF-alpha gefunden, während Gesunde eine Erhöhung als Stressantwort zeigten. Bei Fatigue war zudem die ACTH-Werte und die Speichelcortisolwerte insgesamt niedriger, während das Blutcortisol lediglich basal niedriger war. Damit zeigte sich eine negative Korrelation der IL-6 und TNF-alpha-Stressantwort zur Cortisolstressantwort bei Fatigue, gegenüber einer positiven Korrelation bei Gesunden.9

Eine Studie an Psoriaris-Betroffenen fand eine Korrelation zwischen der Immun- und Zytokinstressantwort (Lymphozyten, Granulozyten, CD3+, CD8+, CD16+/CD56+, CD3+/HLA-DR+) und der Cortisolstressantwort auf den TSST.10

Erhöhte ACTH- und Cortisolstressantworten korrelierten positiv mit erhöhten Granulozyten und Natürlichen Killerzellen und negativ mit B-Lymphozyten. Weiter zeigten sich als Reaktion auf den TSST bei Psoriaris-Betroffenen wie Gesunden10

  • CD4+ – Zellen erhöht
    • CD4+ Zellen lösen typischerweise erhöhte Werte von
      • IL-2
      • IFN-gamma
      • TNF-alpha aus.
  • CD25+ Zellen verringert, aber nur bei Psoriasis-Betroffenen, nicht bei Gesunden
  • IFN-gamma signifikant erhöht
  • IL-2 signifikant erhöht
  • IL-10 signifikant verringert
  • IL-4 signifikant verringert

Bei akut Depressiven zeigte sich (anders als bei Gesunden) eine positive Korrelation der Stressantworten von Cortisol und IL-6 sowie zwischen den Stressantworten von Adrenalin, TNF-α und CRP. Gesunde zeigten lediglich eine signifikante Korrelation zwischen ACTH und CRP-Stressantworten.8
Bei nicht Depressiven wie bei remittierten (gesundeten ehemals) Depressiven fand sich dagegen keine Korrelation zwischen den Stressantworten von Cortisol einerseits und Zytokinen andererseits (IL-6, TNF-α, IL-10).3

Erhöhte chronische Stressspiegel korrelierten – bei remittiert Depressiven wie bei Gesunden – mit erhöhten basalen Blutwerte von IL-6 und IL-10, nicht aber mit TNF-α. Remittiert Depressive hatten höhere chronische Stressspiegel und folglich höhere basale IL-6- und IL-10 Spiegel als Nichtbetroffene.3

Das subjektive Empfinden von akutem Stress korrelierte mit erhöhten basalen Blutwerten von IL-6, nicht aber von TNF-α und IL-10.3 Dabei waren die IL-10 Werte bei der Antizipation eines Stresstests (TSST) bei denjenigen Probanden, die eine hohe Cortisolstressantwort aufwiesen, signifikant erhöht.3

TNF-α unterschied sich weder in der Stress-Antizipationsphase noch in der Stressantwort zwischen Probanden mit einer hohen und einer niedrigen Cortisolstressantwort.3

Eine chronische und anhaltende Erhöhung des Cortisolspiegels kann, als Folge eines andauernden negativen Feedbacks der HPA-Achse, zu einer erniedrigten HPA-Achsen-Aktivität führen, was eine erhöhte Neuroinflammation und eine Beeinträchtigung der kognitiven Funktionen auslöst.11

Während das Ausmaß der Cortisolstressantwort auf einen emotional belastenden Film keine Korrelation zur nachfolgenden kognitiven Kontrolle/Leistung im Stroop-Test zeigte, wurde diese durch höhere stressbedingte Anstiege der proinflammatorischen Zytokine IL-1β, IL-6, und IL-8 stärker beeinträchtigt als durch schwächere Anstiege.12

Adrenalin und Noradrenalin (die ebenfalls ein Teil der endokrinen Stressreaktion sind) verursachen ebenfalls einen TH1-/TH-2-Shift.1314

2.3. Glucocorticoide und das Immunsystem

Die Reaktion auf Glucocorticoide stellt nur ein Teil der Stressantwort dar. Glucocorticoide werden zudem im Wesentlichen erst am Ende der Stressreaktion durch die 3. Stufe der HPA-Achse ausgeschüttet.

Die Stressantwort mancher Zytokine korreliert mit der Höhe der Cortisolstressantwort, die anderer nicht. ADHS-HI ist häufig mit einer abgeflachten Cortisolstressantwort verbunden, ADHS-I sehr häufig mit einer überhöhten Cortisolstressantwort.

Bei der Reaktion auf Antigene fällt der höchste Anstieg der Antikörper mit einem zeitgleichen Anstieg der Glucocorticoide (um das 2 bis 3-fache) und der höchsten Aktivität der Stresshormon produzierenden Zellen des Hypothalamus zusammen.4 IL-1 bewirkt eine unmittelbare Ausschüttung von ACTH und Cortisol (anders als IL-2, INF-gamma und TNF-alpha). Cortisol wiederum hemmt die IL-1-Synthese.15 Damit scheint sich die Immunreaktion von der Stressreaktion zu unterscheiden, bei der Glucocorticoide erst zeitversetzt am Ende der HPA-Achse ausgeschüttet werden.
Zudem produzieren Lymphozyten unmittelbar endokrine Hormone wie ACTH, beta-Endorphine, TSH, GH, Prolaktin.4

2.1.1. Aktivierende Wirkung von Glucocorticoiden

Glucocorticoide erhöhen die Produktion bzw. Ausschüttung von

  • IL-
    • bereits geringe Dexamethasonmengen erhöhen die Endotoxin-induzierte Menge von IL-1β durch Makrophagen16
  • IL-4
    • mittels Hemmung von IL-12, was dessen IL-4-hemmende Wirkung mindert1718 Vor diesem Hintergrund warnen die Autoren vor einer dauerhaften Anwendung von Glucocorticoiden bei Allergien, da diese die Allergieprobleme verschärfen.
    • durch Anregung der IL-4-Produktion von TH-2-Zellen19
    • Studienergebnisse sind widersprüchlich, siehe unten
  • IL-10
    • durch Anregung der IL-10-Produktion von TH-2-Zellen19
  • IL-13
    • durch Anregung der IL-13-Produktion von TH-2-Zellen19
  • IL-18
    • Cushing-Betroffene mit hohen Cortisolspiegeln haben zugleich hohe IL-18-Spiegel5

2.1.2. Hemmende Wirkung von Glucocorticoiden

Glucocorticoide verringern die Produktion bzw. Ausschüttung von

  • IFN-α um 50 bis 60 %5
  • IFN-γ5
    • mittels Unterdrückung der IL-12-Produktion in Antigen-präsentierenden Zellen
    • mittels Verringerung der IL-12-Rezeptor-Empfindlichkeit von Natürlichen Killerzellen und TH-1-Zellen
  • IL-1-Beta
    • durch Verringerung der Trankriptionsrate der Gene dieser Interleukine und der Verringerung der Stabilität ihrer mRNA20
  • IL-25
  • IL-421 (Studienergebnisse sind widersprüchlich, siehe oben)
  • IL-521
  • IL-620
    • andererseits wird Stress der Mutter, der Schäden beim Ungeborenen verursacht, durch IL-6 vermittelt. Die durch pränatalen Stress der Mutter verursachte mangelhafte Entstehung GABAerger Zellen beim Ungeborenen kann durch IL-6-Antagonisten verhindert werden.22
    • Cortisol kann die Expression von IL-6-Rezeptoren in Leberzellen verstärken und die IL-6-vermittelte Produktion von Akutphasenproteinen (APP) induzieren.23
    • Noradrenalin, das (wie Cortisol) Teil der endokrinen Stressreaktion ist, stimuliert dosisabhängig die Expression von IL-6-mRNA sowie die Produktion von IL-6 in Astrozyten mittels β2- und α1-Adrenozeptoren.24 Da die Noradrenalin-Ausschüttung zeitlich noch vor der Aktivierung der HPA-Achse erfolgt, könnte die Hemmung von IL-6 durch Cortisol eine negative Feedbackschleife darstellen, vergleichbar zur Hemmung der HPA-Achse nach erfolgter Stressreaktion.
  • IL-1217
    • was die IL-10-Produktion steigert5
    • Katecholamine vermitteln über β2-Adrenozeptoren ebenfalls eine IL-12-Verringerung über mehrere Tage.25
    • Eine Asthma-Therapie mit Glucocorticoid- und / oder β2-AR-Agonisten verringert vermutlich
      • die Fähigkeit der Antigen-präsentierenden Zellen,17
        • IL-12 zu produzieren
        • die Typ-2-Zytokin-Synthese in aktivierten TH-Zellen zu unterdrücken und
        • die Eosinophilien zu bekämpfen.
      • In der Folge aktivieren diese Antigen-präsentierenden Zellen naive (nicht Zytokin-gebundene) T-Zellen, wodurch
        • IL-4 erhöht wird
        • IFN-γ eingeschränkt wird
      • Im Ergebnis sind Glucocorticoide und β2-AR-Agonisten bei Asthma nur kurzfristig vorteilhaft. Langfristig können sie die Anfälligkeit für allergische Erkrankungen erhöhen. Dies bestätigt sich dadurch, dass Glucocorticoide wie β2-AR-Agonisten die IgE-Produktion potenzieren. 52627
  • die Expression von IL-12-Rezeptoren auf T-Zellen und NK28
  • IL-1321
  • IL-18, wenn auch nicht vollständig5
  • TNF5
  • TGF-β-1 in Gliazellen (auf Dexamethason)29
  • Histamin
    • mittels β2-Adrenozeptoren wird die Histaminproduktion der Mastzellen reduziert. Katecholamine haben die selbe Wirkung.5
      Es wird vermutet, dass verringerte Cortisolspiegel durch erhöhte Histaminspiegel das nächtliche Keuchen von Asthmatikern verursachen.
      Histamin verstärkt über H2-Rezeptoren den TH-1-/TH-2-Shift.5
  • GM-CSF (granulocyte macrophage colony-stimulating factor)21

  1. Wolf (2012): Die regulatorische Rolle von Cortisol und Wachstumshormon auf die Zytokinproduktion humaner T-Lymphozyten und die TH-1/TH2-Balance; Dissertation

  2. Müller, Schwarz (2007): Immunologische Aspekte bei depressiven Störungen, Nervenarzt 2007 · 78:1261–1273 DOI 10.1007/s00115-007-2311-3

  3. Poidinger (2015): Immunparameter bei remittiert depressiven und gesunden Probanden unter Berücksichtigung der Reaktion auf die Exposition mit psychosozialen Stressoren. Dissertation, n = 71

  4. Müller: Psychoneuroimmunologische Grundlagen psychischer Erkrankungen, in: Möller, Laux, Kapfhammer (Hrsg.) (2017): Psychiatrie, Psychosomatik, Psychotherapie, Band 1, 5. Auflage, Kapitel 11, S. 291 – 310

  5. Elenkov (2004): Glucocorticoids and the Th1/Th2 balance. Ann N Y Acad Sci. 2004 Jun;1024:138-46.

  6. Kunz-Ebrecht, Mohamed-Ali, Feldman, Kirschbaum, Steptoe (2003): Cortisol responses to mild psychological stress are inversely associated with proinflammatory cytokines, Brain, Behavior, and Immunity, Volume 17, Issue 5, 2003, Pages 373-383, ISSN 0889-1591, https://doi.org/10.1016/S0889-1591(03)00029-1. n = 199

  7. Izawa, Sugaya, Kimura, Ogawa, Yamada, Shirotsuki, Mikami, Hirata, Nagano, Nomura (2013): An increase in salivary interleukin-6 level following acute psychosocial stress and its biological correlates in healthy young adults, Biological Psychology, Volume 94, Issue 2, 2013, Pages 249-254, ISSN 0301-0511, https://doi.org/10.1016/j.biopsycho.2013.06.006. n = 50

  8. Weinstein, Deuster, Francis, Bonsall, Tracy, Kop (2010): Neurohormonal and inflammatory hyper-responsiveness to acute mental stress in depression, Biological Psychology, Volume 84, Issue 2, 2010, Pages 228-234, ISSN 0301-0511, https://doi.org/10.1016/j.biopsycho.2010.01.016. n = 28

  9. Gaab, Rohleder, Heitz, Engert, Schad, Schürmeyer, Ehlert (2005): Stress-induced changes in LPS-induced pro-inflammatory cytokine production in chronic fatigue syndrome, Psychoneuroendocrinology, Volume 30, Issue 2, 2005, Pages 188-198, ISSN 0306-4530, https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2004.06.008.

  10. Buske-Kirschbaum, Kern, Ebrecht, Hellhammer (2007): Altered distribution of leukocyte subsets and cytokine production in response to acute psychosocial stress in patients with psoriasis vulgaris, Brain, Behavior, and Immunity, Volume 21, Issue 1, 2007, Pages 92-99, ISSN 0889-1591, https://doi.org/10.1016/j.bbi.2006.03.006. n = 48

  11. Verlaet, Noriega, Hermans, Savelkoul (2014): Nutrition, immunological mechanisms and dietary immunomodulation in ADHD. Eur Child Adolesc Psychiatry. 2014 Jul;23(7):519-29. doi: 10.1007/s00787-014-0522-2.

  12. Shields, Kuchenbecker, Pressman, Sumida, Slavich (2016): Better cognitive control of emotional information is associated with reduced pro-inflammatory cytokine reactivity to emotional stress. Stress. 2016;19(1):63-8. doi: 10.3109/10253890.2015.1121983.

  13. Elenkov, Chrousos (1999): Stress Hormones, Th1/Th2 patterns, Pro/Anti-inflammatory Cytokines and Susceptibility to Disease, Trends in Endocrinology & Metabolism, Volume 10, Issue 9, 1999, Pages 359-368, ISSN 1043-2760, https://doi.org/10.1016/S1043-2760(99)00188-5.

  14. Elenkov, Wilder, Chrousos, Vizi (2000): The Sympathetic Nerve – An Integrative Interface between Two Supersystems: The Brain and the Immune System. Pharmacological Reviews December 2000, 52 (4) 595-638

  15. Besedovsky, del Rey, Sorkin, Dinarello (1986): Immunoregulatory feedback between interleukin-1 and glucocorticoid hormones. Science 08 Aug 1986: Vol. 233, Issue 4764, pp. 652-654, DOI: 10.1126/science.3014662

  16. Brough-Holub, Kraal (1996): Dose‐ and time‐dependent activation of rat alveolar macrophages by glucocorticoids. Clinical & Experimental Immunology, 104: 332-336. doi:10.1046/j.1365-2249.1996.29733.x

  17. DeKruyff, Fang, Umetsu (1998): Corticosteroids Enhance the Capacity of Macrophages to Induce Th2 Cytokine Synthesis in CD4+ Lymphocytes by Inhibiting IL-12 Production. J Immunol March 1, 1998, 160 (5) 2231-2237

  18. Blotta, DeKruyff, Umetsu (1997): Corticosteroids inhibit IL-12 production in human monocytes and enhance their capacity to induce IL-4 synthesis in CD4+ lymphocytes. J Immunol June 15, 1997, 158 (12) 5589-5595

  19. Ramírez, Fowell, Puklavec, Simmonds, Mason (1996): Glucocorticoids promote a TH2 cytokine response by CD4+ T cells in vitro. J Immunol April 1, 1996, 156 (7) 2406-2412

  20. Chrousos (1995): The hypothalamic-pituitary-adrenal axis and immune-mediated inflammation. N Engl J Med. 1995 May 18;332(20):1351-62.

  21. Jee, Gilmour, Kelly, Bowen, Richards, Soh, Smith, Hawrylowicz, Cousins, Lee, Lavender (2005): Repression of Interleukin-5 Transcription by the Glucocorticoid Receptor Targets GATA3 Signaling and Involves Histone Deacetylase Recruitment. J. Biol. Chem. 2005 280: 23243-. doi:10.1074/jbc.M503659200

  22. Gumusoglu, Fine, Murray, Bittle, Stevens (1995): The role of IL-6 in neurodevelopment after prenatal stress. Brain Behav Immun. 2017 Oct;65:274-283. doi: 10.1016/j.bbi.2017.05.015.

  23. Jain, Gautam, Naseem (2011): Acute-phase proteins: As diagnostic tool. J Pharm Bioallied Sci. 2011 Jan-Mar; 3(1): 118–127. doi: 10.4103/0975-7406.76489 PMCID: PMC3053509 PMID: 21430962

  24. Norris, Benveniste (1993): Interleukin-6 production by astrocytes: Induction by the neurotransmitter norepinephrine, Journal of Neuroimmunology, Volume 45, Issues 1–2, 1993, Pages 137-145, ISSN 0165-5728, https://doi.org/10.1016/0165-5728(93)90174-W.

  25. Elenkov, Papanicolaou , Wilder, Chrousos (1996): Modulatory effects of glucocorticoids and catecholamines on human interleukin-12 and interleukin-10 production: clinical implications. Proceedings of the Association of American Physicians, 01 Sep 1996, 108(5):374-381. PMID:8902882

  26. Zieg, Lack, Harbeck, Gelfand, Leung (1994): In vivo effects of glucocorticoids on IgE production. Journal of Allergy and Clinical Immunology, Volume 94, Issue 2, Part 1, 1994, Pages 222-230, ISSN 0091-6749, https://doi.org/10.1053/ai.1994.v94.a54936.

  27. Coqueret, Lagente, Frere, Braquet, Mencia-Huerta (1994): Regulation of IgE Production by β2‐Adrenoceptor Agonists. Annals of the New York Academy of Sciences, 725: 44-49. doi:10.1111/j.1749-6632.1994.tb39788.x

  28. Wu, Wang, McDyer, Seder (1998): Prostaglandin E2 and Dexamethasone Inhibit IL-12 Receptor Expression and IL-12 Responsiveness; J Immunol September 15, 1998, 161 (6) 2723-2730

  29. Batuman, Ferrero, Cupp, Jimenez, Khalili (1995): Differential regulation of transforming growth factor beta-1 gene expression by glucocorticoids in human T and glial cells. J Immunol November 1, 1995, 155 (9) 4397-4405

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